Разное

Рассада и нашатырный спирт: применение нашатыря. Как опрыскивать и поливать помидоры? Как развести? Пропорции

Содержание

применение нашатыря. Как опрыскивать и поливать помидоры? Как развести? Пропорции

Если растения становятся бледными и желтыми, не цветут или не плодоносят – значит, им не хватает азота. Для того чтобы рассада была сильной и крепкой, необходимо подкармливать ее нашатырным спиртом, который благодаря своим свойствам является идеальным удобрением. Также он способен избавить растения от некоторых вредителей и болезней, поэтому применять аммиак крайне полезно.

Свойства

С помощью нашатыря огородники могут не допустить закисления почвы и сделать ее более качественной. Вместе с аммиаком в землю попадает азотистое соединение, которое в природных условиях можно получить от переработки перегноя. Разница лишь в том, что перегной действует в течение 2-3 лет, а нашатырный спирт – практически мгновенно.

После внесения удобрения можно заметить, что стебли растений стали мясистыми и прочными, листья укрупняются и имеют насыщенный зеленый оттенок. Рассада становится крепкой, здоровой и стойко переносит любые заболевания. Также средство можно применять для борьбы с различными насекомыми, такими как:

  • морковная муха;
  • проволочник;
  • долгоносик;
  • тля.

Нашатырь способен парализовать дыхание вредителей, от чего они и погибают. Обоняние насекомых является тонким, поэтому они равнодушны в обработанной рассаде, пока она не избавится от аммиачного запаха.

Для каких растений и когда применять?

Азотное питание является важным элементом ухода за растениями, в нем нуждаются все культуры. Но чаще всего данная подкормка используется для рассады следующих растений:

  • томаты;
  • лук;
  • капуста;
  • свекла;
  • смородина;
  • картофель;
  • огурцы.

Многие не знают, когда именно следует подкармливать рассаду. Существует несколько признаков того, что растениям не хватает азота.

  1. Листья из зеленых становятся бледно-зелеными или приобретают желтый цвет. Это происходит по причине задержки образования хлорофилла. Также нарушается процесс фотосинтеза.
  2. Рост культуры замедляется.

Как развести и использовать?

Для каждой культуры существует своя схема внесения подкормок, поэтому необходимо рассмотреть каждую из них.

Томаты

Помидоры крайне активно потребляют азот в начале роста, поэтому рассаде необходимо внесение азотных удобрений. Спустя 14 дней после того как появились всходы, необходимо подкормить томаты нашатырным спиртом первый раз. Для приготовления раствора необходимо взять чайную ложку аммиака и развести ее в литре воды. Смесью следует опрыскивать листья и стебли. Также нужна обработка тыльной стороны листвы.

Высаживая томаты в грунт, нужно провести еще одну обработку данным средством. 10 мл нашатырного спирта следует развести в 10 литрах жидкости. Раствор подливается в лунки, в каждой из которых должно быть по 500 мл. Применение удобрения на этом этапе позволяет рассаде адаптироваться к новым условиям и легко пережить стресс. Подкормка должна повториться через 10 дней.

Так же необходимо подкармливать перцы и баклажаны.

Огурцы

Применение нашатыря для огурцов начинается, когда на огуречных плетях начинают отрастать боковые побеги. Раствор готовится следующим образом: половину чайной ложки средства нужно растворить в полутора литрах воды. Важно не перепутать пропорции, чтобы подкормка получилась полезной и не навредила растению.

Сначала раствором следует поливать рассаду каждую неделю, после – каждые 4 дня. Когда число внесений удобрения увеличивается, нужно увеличить и концентрацию раствора – полторы чайной ложки в соотношении с 1,5 литрами воды.

Капуста

Полив капусты подкормками на основе нашатырного спирта – идеальный вариант для тех, кому нужно вырастить большой и крепкий урожай. Для удобрения данной культуры надо разводить 10 мл нашатыря в ведре жидкости. В процессе посадки в каждую из лунок необходимо помещать 500 мл средства. Аммиак способен укрепить рассаду капусты и избавить ее от вредных насекомых.

Перец

Чаще всего обработка рассады перца нашатырем делается после того, как на ней появляются четвертные листья. До этого не следует его использовать, так как растению не нужно много азота. Существует два этапа обработки данной культуры.

  • Первый раз для подкормки нужен следующий раствор: чайная ложка аммиака разводится в литре воды. Перец следует поливать под корень. Нужно следить за тем, чтобы средство не попадало на зеленые участки рассады, такие как листва и побеги. Проводится данная подкормка прямо на рассаде.
  • Второй раз нужно приготовить такой раствор: 3 столовых ложки нашатырного спирта на ведро жидкости (около 10 литров). Также нужно поливать рассаду под корень, не попадая на листву и стебли. Проводить подкормку необходимо после высадки культуры в грунт, это поддерживает здоровье растений.

Чтобы рассаду перца не съели насекомые, нужно чайную ложку нашатыря развести в литре воды и обрызгать растения. Это поможет защитить культуру от долгоносика и дрозофилы, которые достаточно часто нападают на грядки с нежной рассадой.

Для избавления от тли нужен более сильный раствор, так как данное насекомое способно прижиться практически на любом растении в любых условиях. Чтобы борьба была эффективной, необходимо 50 мл спирта развести в литре кипятка. К данному раствору добавляется 100-200 граммов хозяйственного мыла, в составе которого находятся нужные вещества для того, чтобы убить тлю. Рассада опрыскивается посредством пульверизатора. Если через несколько недель тля возвращается, следует еще раз опрыскать культуру.

Баклажаны

Если рассаде баклажанов не будет хватать азота, она станет тонкой и хилой, впоследствии чего культура принесет небольшой урожай, а в некоторых случаях растения и вовсе погибают. Чтобы избежать подобных проблем, перед высадкой растений в грунт нужно обработать их нашатырем. Нормы приготовления средства следующие: чайная ложка нашатырного спирта растворяется в литре воды. Рассада поливается под корень.

Данная подкормка нужна на первых этапах высадки баклажанов и после того, как их переместили в обычный грунт. Впоследствии количество поливов сокращается, а после и вовсе можно прекратить вносить удобрения.

Лук и чеснок

Данные растения крайне восприимчивы к подкормкам вне корней. Обрабатывать культуры необходимо с помощью пульверизатора, тогда раствор будет разбрызгиваться равномерно и работать эффективно. Для приготовления удобрения нужно 3 столовых ложки нашатыря развести в 10 литрах воды. Обрабатывать следует листву.

Обработка проводится как профилактика роста, а также является профилактической мерой от сухости, скрученности и желтизны листьев. Нашатырь является средством, которое может быть опасно для человека, но всегда полезно для растений, так как способствует их благоприятному росту.

Также данное средство избавляет огородников от разнообразных вредителей, которые могут значительно попортить рассаду. Важно помнить о дозировке, ведь каждому растению нужно готовить свой раствор.

Меры безопасности

Нашатырный спирт находится в группе средств, которые могут причинять вред здоровью людей. Он способен попадать в организм человека через кожные покровы и слизистые оболочки. Поэтому использовать его для различных культур нужно аккуратно, важно соблюдать меры безопасности:

  • готовя раствор, стоит пользоваться респиратором, чтобы контакт со средством был минимальным;
  • в процессе опрыскивания необходимо защитить глаза с помощью специальных очков;
  • работа должна проводиться в перчатках;
  • по окончании процедуры опрыскивания следует тщательно вымыть лицо и руки;
  • одежда, в которой человек был в процессе обработки, должна быть снята и отправлена в стирку.

Когда не стоит применять средство?

Опытные огородники не рекомендуют пользоваться нашатырным спиртом в следующих случаях:

  • на солнцепеке, так как в слишком жаркую погоду возрастает риск отравления парами нашатыря;
  • при повышенном артериальном давлении или симптомах ВСД;
  • если рядом с растениями находятся другие люди без средств защиты.

Более детальную информацию о том, как использовать аммиак как удобрениие для томатов, смотрите в следующем видео.

Нашатырный спирт для рассады томатов и перца

Опытные огородники иногда используют нашатырь для помидоров в качестве подкормки. Удобрение стоит копейки, а найти его можно практически в каждом доме. Нашатырь действует на растения волшебным образом, результат можно заменить практически сразу – рассада и взрослые растения буквально пышут здоровьем.

Чтобы нашатырь действовал только на пользу томатам, нужно знать, как его правильно применять при подкормке.

Полезные свойства

Нашатырный спирт – водный аммиачный раствор. Он отлично растворяется в воде и имеет характерный резкий запах, который при больших концентрациях даже может вызвать отравление. Основным элементом в нашатыре является аммиак. Аммиак при попадании в почву быстро проникает даже в самые глубокие слои и интенсивно питает корневую систему растений. Как следствие, увеличивается рост помидорного куста, образовываются сочные зеленые листья, куст выглядит привлекательным.

В нашатырном спирте нет побочных добавок и химически опасных веществ, он не отравляет грунт и не накапливается в нем. При внекорневых подкормках из-за резкого запаха спирт служит надежным инсектицидом, растениям становятся не страшны насекомые и вредители.

Плюсы и минусы использования

Нашатырный спирт в качестве удобрения получил много положительных откликов. Его хвалят за:

  • быстрый результат. Эффект можно будет заменить уже со второй подкормки;
  • поддержание иммунной способности растений, снижение риска возникновения грибковых и вирусных инфекций;
  • минимальный расход. Для приготовления удобрения требуется не более 2 столовых ложек вещества.

Однако добавка имеет некоторые негативные последствия из-за переизбытка аммиака в почве. В первую очередь, это чрезмерное образование зеленой массы. По-другому говорят, что помидоры «жируют» — плодоношения не возникает, зато на стебле образовывается большое количество листьев.

Чтобы избежать этого, подкормку проводят с соблюдением определённых пропорций и с заданной частотой. Ни в коем случае нельзя пренебрегать рекомендациями и применять нашатырный спирт бездумно для подкорма. Это приведет к тому, что урожая практически не будет.

Зачем нужен азот перцам

Кусты перца интенсивно впитывают нитраты, которые затем преобразуются в азот. Азот нужен культурам для интенсивного роста, наращивания зелени, выработки хлорофилла, оказывает влияние на цветение кустов, то есть и на качество выросших плодов.

Аммиак кусты поглощают не очень охотно, поэтому нашатырь советуют применять начинающим огородникам — при подкормке перца нашатырным спиртом не произойдет перенасыщения кустов азотом.

Аммиак — обязательное промежуточное соединение, возникающее при естественном цикле азота. Азот частично преобразуется в аммоний просто на свежем воздухе, если есть влага, без помощи каких-либо микроорганизмов. Из-за этого подкармливайте культуры нашатырем — это может дать больший эффект, чем использование органики, так как для получения нитратов из органики необходим интенсивный почвенный биосинтез.

На небольшом участке, который активно используется, обычно мало микроорганизмов в земле. В таком случае перцам трудно добывать азот из почвы, даже если внесены удобрения. Изменить состав земли можно, внося перегной, но на это уходит довольно много времени и денег. Обрабатывайте перчики нашатырем, что поможет культуре избежать стрессов, прижиться и давать обильные урожаи, а на участке не появится множество паразитов из-за применения удобрений.

Подробнее: Топ-9 удобрений с серой для растений, инструкция по применению и когда вносить

Аммоний — щелочь. Из-за этого удобрение нашатырем вместе с подкормкой органикой препятствует появлению земли с кислыми характеристиками. В землю подкладывают известь, только если почва стала кислой.

Нашатырь против вредителей томатов

Весной, после того, как томаты пересаживают в теплицу или открытый грунт, их могут атаковать насекомые. Часто на помидоры нападают тля, мошка, гусеницы, клещи. Чтобы отпугнуть вредителей, готовят следующее средство:

  • 2 ст.л. нашатыря;
  • ведро воды.

Растворяют спирт в воде, переливают в пульверизатор и орошают ветки, листья и стебель растений. Первую обработку проводят через 2-3 недели после высаживания, повторяют орошение спустя 2 недели.

Важно! Воду для изготовления средства нужно брать комнатной температуры. Чересчур холодная вода может спровоцировать гниль на листьях.

Применение нашатырного спирта для клубники

Как ухаживать за клубникой ранней весной, я уже рассказывала. Но хочу обратить внимание на подкормку и обработку от вредителей, в первую очередь от земляничного долгоносика с помощью нашатырного спирта.

В одном из источников было сказано, что азот клубника усваивает слабо. Но зато как предохранительное средство от долгоносика, муравьев и слизней раствор аммиака просто не заменим. Причем, обработку проводят по мульче, поскольку в ней, особенно в скошенной траве могут тоже быть вредители. Рабочий раствор готовят из расчета 2 ст. л. 10% раствора аммиака на 10 л воды, хорошо перемешивают и поливают грядку всплошную. На грядку длиной в 5 метров, должно уйти не менее 10 л раствора. Обработку клубники проводят по влажной земле после полива или дождя.

Подкармливать и обрабатывать от вредителей клубнику во время цветения и плодоношения не рекомендуется. Но после сбора урожая кустики можно провести еще одну подкормку.

Виды подкормок помидоров

В большинстве случаев нашатырный спирт применяют в первую фазу выращивания. Удобрения вносят внекорневым и корневым способом. Обе разновидности приемлемы и по-своему хороши.

При внекорневой подкормке аммиак напрямую проникает в поры листьев и стебля и насыщает их азотом.

Корневая подкормка считается стандартным способом получения питательных веществ и в основном питает корень.

Внекорневой метод

Орошение слабым раствором аммиака можно проводить не раньше, чем через 2 недели после пересадки помидоров. На ведро воды берут столовую ложку спирта. Быстро размешивают, чтобы аммиак не успевал испариться, и наносят раствор на листья рассады в утреннее время.

При вечернем использовании влага с листьев может испариться не полностью, в результате образовывается плесень и грибок. Внекорневую подкормку следует применять каждую неделю на протяжении мая и июня, но не более 3-4 раз за весь период выращивания.

Корневой метод

Схема разведения для корневого подкорма следующая:

  • 1 ст.л. нашатырного спирта;
  • ведро теплой воды.

Свежеприготовленную добавку заливают в помидорные лунки из расчета не менее 0,5 литра на один куст. Затем для усиления эффекта почву мульчируют опилками или соломой, чтобы влага дольше задержалась в грунте. Начало подкормки – конец мая — начало июня с периодичностью 1 раз в 10 дней. До начала момента цветения должно быть проведено не более 3 подкормок.

Нашатырный спирт для комнатных цветов

Пересадив комнатные растения в питательный субстрат, запаса питательных веществ ему хватает максимум на 2 месяца. Полезные вещества поглощаются растениями, а часть из них вымывается из горшка через дренажные отверстия при поливе. Недостаток азота у комнатных цветов приводит к тому, что листья теряют насыщенный зеленый цвет, молодые листья желтеют и отмирают, растения теряют способность к цветению. Растения не могут сопротивляться болезням и вредителям. Комнатные цветы испытывают недостаток питания и больше всего они нуждаются в азоте. Если у растения не наступает период покоя, то оно требует постоянных подкормок во время роста и цветения.

Простой и эффективный способ спасти растения, это полить их раствором нашатырного спирта, обеспечив их необходимым количеством азота. Для этого сделайте раствор в таких пропорциях (на выбор в зависимости от нужного объема жидкости):

  • на 10 л воды – 5 ст. л. нашатырки, или
  • на 5 л воды – 1,5-2 ст. л. раствора аммиака, или
  • на 1 л воды – 1 чайная или 1 десертная ложка.

Размешайте хорошо рабочий раствор и полейте растение. Сколько налить воды, зависит от объема горшка и возраста растения, но не более 25 мл на маленькое и не более 200 мл – на больше растение.

Комнатные растения также страдают от тли, которую, скорее всего, заносят с садовой почвой. Для борьбы с тлей и мошками наведите раствор: на 2 л воды добавьте 3 ст. л. нашатырки. Обработки проводите 1 раз в 7-10 дней, пока не исчезнет проблема. Для обработки почвы от мошек-дрозофил обработайте раствором 1 ст. л препарата на 1 л воды.

И еще один важный момент. Перед тем, как посадить растение в новый горшок, не забудьте его продезинфицировать горячим раствором нашатырного спирта. Для этого натрите 100 г хозяйственного мыла, растворите стружку в 5 л горячей воды и добавьте 60 мл 10% раствора аммиака. Раствор тщательно размешайте, промойте им горшки и хорошо прополощите под проточной водой.

В заключение хочу сказать, что нашатырный спирт — не панацея. Это всего лишь один из вариантов решения какой-то проблемы в саду или огороды. Все-таки аммиак — ядовитое вещество и оно может быть губительным при чрезмерном его употреблении. По возможности выбирайте альтернативные способы подкормки растений и борьбы с вредителями. И очень рекомендую к просмотру это видео.

Подкормка рассады томатов

Для ускорения роста рассады можно воспользоваться нашатырем. Концентрация для молодых, неокрепших растений должна быть меньше, чем для взрослых. Нужно взять на 8-10 литров воды чайную ложку вещества. Полученным раствором поливают молодую рассаду, возраст, который уже достиг месяца, не раньше. Для стимуляции роста стебля будет достаточно 2-3 подкормки с интервалом в 7-10 дней.

Внимание! При использовании нашатыря от других азотных удобрений отказываются, чтобы не возникло переизбытка азота.

В период цветения и плодоношения

Для поддержания образования завязей аммиак необходим, но в меньшем количестве. Когда на томатных кустах образовались цветки, чтобы они не опадали, готовят удобрение:

  • 10 литров воды;
  • 1 ст.л. калия сернокислого;
  • 1 ч.л. нашатыря.

После разведения поливают удобрением растения под корень 1 раз в неделю. Удобрение можно использовать 2-3 раза за весь период цветения.

Для уже плодоносящих кустов аммиак помогает увеличить урожай и улучшить его качество. Понадобятся:

  • ч.л. сернокислого калия;
  • 1 ч.л. суперфосфата;
  • 1 ч.л. нашатырного спирта.

Количество указанных ингредиентов рассчитано на ведро воды. Растворяют все компоненты и поливают плодоносящие растения под стебель. Повторяют полив через 10 дней после первого раза.

Внесение нашатыря

В начале роста плодово-овощные культуры потребляют азот очень активно, поэтому рассаде будет очень полезна подкормка аммиаком. Через две недели после появления всходов в первый раз нашатырем подкармливают рассаду помидоров. Чтобы приготовить питательный раствор, необходимо 1 ч. л. нашатыря развести на 1 литр воды. Нужна обработка листьев и стеблей рассады. Необходимо опрыскивать и тыльную сторону листвы.

При посадке рассады томатов в грунт проводят вторую подкормку аммиаком. Для этого 10 мл нашатыря разводят в 10 л воды и подливают раствор в каждую лунку по 500 мл. Благодаря этой процедуре саженцы легче адаптируются к новым условиям и быстрее переживут стресс, доставленный пересадкой. Повторяют подкормку через 10 дней по той же схеме. Точно также удобряют саженцы баклажанов и перца.

Как только на огуречных плетях отрастут боковые побеги, грядки начинают удобрять раствором аммиака. Для приготовления питательного раствора для огурцов следует ½ ч. л. препарата растворить в 1,5 л воды. Сначала подкормку вносят каждую неделю, а затем начинают подливать огурцы каждые 4 дня. С увеличением числа внесения удобрения увеличивают и концентрацию раствора – на 1,5 л воды берут 1,5 ч. л. нашатыря.

Все виды и сорта капусты очень отзывчивы на внесение подкормки на основе нашатырного спирта. Аммиачный раствор капуста усваивает намного лучше минерального. Для приготовления удобрения 10 мл нашатыря разводят в ведре воды. При посадке рассады капусты в каждую лунку выливают 500 мл раствора. Аммиак не только укрепит пересаженную рассаду, но и отпугнет насекомых-вредителей. Когда начнут формироваться кочаны, капусту подкармливают второй раз из лейки раствором, приготовленным из 100 мл нашатыря и 10 л воды.

Хотя клубника предпочитает получать азот из органики, ее обрабатывают нашатырем для защиты от насекомых и болезней. Как только на кустах после зимовки начнут отрастать первые листья, грядки опрыскивают раствором, приготовленным из 40 мл нашатыря и 10 л воды. Процедуру следует повторить трижды за весь сезон.

Любые взрослые растения и только что высаженную рассаду полезно обрабатывать нашатырным раствором. Можно ли вносить нашатырь непосредственно в почву во время созревания плодов? Конечно, такая подкормка будет очень полезной и полностью безопасной.

Следует приготовить раствор из 10 мл 10 %-ного аммиака и 10 л воды. Если концентрация спирта – 25 %, то пропорции должны быть соответствующими. Приготовленный раствор должен быть очень тщательно вымешан. Его вносят прямо под кусты, например, томатов, из расчета 1 литр на одно растение.

Прежде чем начинать удобрять огород приготовленным раствором, следует за несколько часов обильно полить кусты простой водой. Если этого не сделать, подкормка может обжечь корни.

Рекомендуется проводить подкормки азотосодержащими растворами трижды за весь сезон. Чаще этого делать не нужно, исключение составляют лишь огурцы. Первый раз удобряют рассаду, затем – в период наращивания кустами зеленой массы и во время созревания плодов. Вносить азотистые удобрения во время бутонизации не надо, так как растения в этот период не нуждаются в азоте.

В нашатырном спирте содержится много азота, в котором нуждаются растения, особенно – помидоры и перец во время дозревания плодов. Поэтому так важно не пропустить период, когда нужно внести нашатырь. Такая подкормка не нанесет ущерба кустам и повысит качество плодов.

Необходимо в 10 л воды растворить 200 мл натурального яблочного уксуса и добавить 1 ст. л. 10 %-ного аммиака и 10 мл мыльного раствора или жидкого мыла для мытья рук. Состав должен быть хорошо перемешан до однородности. Им опрыскивают помидоры прямо на кустах из пульверизатора. В результате скорость дозревания томатов возрастет, как и масса плодов. Применение опрыскиваний полезно и огурцам. Даже самый урожайный сорт нуждается в таких подкормках.

Как стимулятор созревания томатов

Чтобы помидоры быстрее зрели, используют корневую подкормку на основе нашатыря. Разводят 20 миллилитров в 10 литрах воды и поливают под корень уже плодоносящие томатные кусты через каждые 3-4 дня в течение 3 недель. Цвет томатов с каждым внесением удобрений будет меняться, сами плоды дозревают в кратчайшие сроки и готовы к снятию.

Узнайте, как и для чего использовать ботву помидоров на огороде.

Отзывы

Огородники с удовольствием пользуются добавкой и отзываются про нее только с положительной стороны. По мнению большинства садоводов, особенный эффект нашатырная подкормка производит на вяло растущие растения, листья которых имеют желтые пятна и сухие кончики. Буквально 2-3 корневые или внекорневые подкормки нашатырем — и помидоры уже не узнать: желтизна моментально уходит, стебель становится сочным и устремляется ввысь.

Однако опытные садоводы предупреждают, что использовать нашатырный спирт нужно только в том случае, если в нем есть необходимость. Если помидоры и без того хорошо растут, выглядят здоровыми, то в подкормке нет нужды.

Понравился пост? Добавьте его в избранное

Все ваши статьи будут на этой странице.

Отправь статью в свою соцсеть!

Об подкармливании нашатырным спиртом

Для получения хорошего урожая, как в отрытом грунте, так и в теплице, стоит использовать удобрения. Для наглядности будет приведена информация, как использовать нашатырный спирт для рассады томатов, огурцов и перцев, для чего он нужен, и в чём заключается его польза для вышеупомянутых растений.

Подкармливают томаты нашатырным спиртом

Достоинства нашатырного спирта:

  1. Аммиачный раствор, или нашатырь, необходим растениям в первые недели после посадки в открытый грунт, так как именно в это время азот, которым богат раствор, помогает саженцам окрепнуть и быстрее расти, формируя не только развитую корневую систему, но и обильную лиственную массу.
  2. Помимо подкормки, нашатырь действует в виде защиты, оберегая саженцы от вредителей и болезнетворных бактерий.

В ряды недостатков стоит включить:

  • обязательное соблюдение концентрации вещества в процессе использования;
  • принятие защитных мер во избежание нанесения вреда здоровью человека и растения.

Полезно. Наряду с другими азотосодержащими удобрениями, аммиачный раствор занимает лидирующую позицию, имея 82% содержания пниктогена, в отличие от мочевины, в которой содержится только 46% указанного микроэлемента.

подкормка, полив и обработка в огороде

Опытные садоводы и огородники знают о том, что использование подручных средств для ухода за посадками может заменить профессиональные составы. При этом воздействие химикатов на растение снижается, а качество урожая повышается. Нашатырный спирт при грамотном подходе может стать настоящим помощником овощеводу. Как использовать нашатырный спирт для помидоров и огурцов, рассмотрим в настоящей статье.

 

Общая информация

Нашатырь — это концентрированный аммиачный раствор. Аммиак — азотистое соединение, легко поглощаемое растениями. Азотистые подкормки требуются помидорам при недостатке микроэлементов, а также используются в целях профилактики минерального дефицита.

Существуют определенные признаки, свидетельствующие о том, что растение нуждается в подкормке азотом:

  • желтые и побледневшие нижние листья. Это в равной степени относится как к рассаде, так и взрослым растениям.
  • мельчание листьев — когда по мере роста появляются более мелкие листья, чем изначально;
  • тоненький и хрупкий стебель;
  • замедление и остановка роста;
  • плохое цветение или полное его отсутствие;
  • повышенная восприимчивость в неблагоприятному изменению погодных условий.

Игнорирование подобных симптомов может быть плачевным для огородника. При недостатке азота урожайность снижается на треть, а качество плодов оставляет желать лучшего.

Запах аммиака достаточно резкий и неприятный не только для человека, но и для насекомых. Если человек перестает чувствовать неприятный запах после того, как аммиак выветривается, то насекомые ощущают его длительное время и стараются держаться подальше от таких мест.

Пропорции и дозировки.

Следует учитывать. Что негативное воздействие оказывает как недостаток, так и избыток азота в почве. О переизбытке азота свидетельствуют следующие признаки:

  • активное нарастание вегетативной массы с отсутствием цветения;
  • появление признаков грибковых заболеваний.

Азотистое удобрение из нашатырного спирта — универсальное средство, применяемое для овощных и цветочных культур, а также кустарников и деревьев.

Существует несколько вариантов приготовления рабочего раствора. Для корневых подкормок плодовоовощных культур 10 мл нашатыря разводят в ведре воды. Этим составом поливать грядки 2 раза в неделю. Достаточно 4-5 поливов.

Для того чтобы использовать нашатырный спирт как удобрение для внекорневых подкормок разводят 2-х процентный аммиачный раствор. На ведро воды понадобится 20 мл нашатырного спирта. Такое удобрение подойдет и для полива рассады.

Для цветов и луковичных овощей используется 0,3-х процентный раствор (на ведро 30 мл). 0,4-х и 0,5-ти процентный аммиачный состав используется в крайних случаях, когда необходимо провести обработку почвы при экстренном азотном голодании почвы.

Аммиачная обработка помидоров на разных стадиях вегетационного периода.

Уход за томатами с помощью нашатырного спирта начинать следует на этапе высевания семян на рассаду. Если помидоры будут выращиваться в пластиковых емкостях, то перед засыпанием грунта их следует обработать слабым раствором нашатыря. Эта мера позволит предотвратить распространение болезнетворных микроорганизмов и заражение почвы грибками.

Рассада поливается 2-х процентным раствором нашатырного спирта при появлении признаков недостатка азота. Поливать нужно каждый четвертый раз, чередуя с поливами обычной водой.

Для активизации процесса созревания плодов можно использовать следующий «коктейль»: на ведро воды взять стакан яблочного сока и по 10 мл нашатырного спирта и жидкого мыла. Этим раствором опрыскиваются созревающие томаты. Обработка ускорит созревание урожая и защитит плоды от поражения вредителями.

Мнение специалистов.

Чаще всего профессионалы в агрономическом секторе с недоверием относятся в народным методам, так как при смешивании легко можно преувеличить дозировки и навредить посадкам. Обработка нашатырным спиртом в большинстве случаев вызывает одобрение. Во-первых, аммиак не заражает почву. Во-вторых, объединяет защитную функцию и питание. То есть нашатырный спирт воспринимается как экологически чистое средство для защиты помидоров и других культур.

Нашатырный спирт для рассады, подкормка, применение

При нехватке азота растения не только теряют свежий вид, становясь бледными и желтоватыми, но и перестают цвести и плодоносить. В таких случаях садоводы используют нашатырный спирт для рассады. Он не только является удобрением для растений, но и защищает их от болезней и насекомых. Применение нашатырного спирта для рассады дает положительный эффект.

Нашатырный спирт для рассады — применение

Как для человека основным продуктом питания является хлеб, так для рассады лучшим удобрением считается аммиак. Особенность его применения для рассады в том, что его не бывает много. Это значит, что растения всегда нуждаются в аммиаке, их невозможно перекормить аммиаком. Обработка рассады нашатырным спиртом эффективна против многих садовых вредителей.

Так, он защищает рассаду клубники от долгоносика. Средство беспощадно к тле на розах, кустах смородины и деревьях. Плюсом его применения является его всесезонность – использовать его можно в любой период развития растения. Самое важное в этом процессе – приготовить правильную концентрацию средства. От точности дозировки напрямую зависит его эффект .

Как развести нашатырный спирт для рассады?

В зависимости от того, на какую огородную культуру рассчитано средство и для каких целей оно применяется, готовится консистенция из спирта и воды. При подкормке рассады нашатырным спиртом их пропорции на 10 л воды берут:

  • 1 ст. л. 25% аммиака – максимальная дозировка для «скорой помощи» растениям при явной нехватке азота;
  • 3 ст. л. 25% нашатырного спирта – для плодовых и овощных культур;
  • 50 мл – в целях опрыскивания огородных культур;
  • 25 мл – в целях полива цветов и луковичных растений;
  • 1 ч. л. – для рассады и внекорневой подкормки цветочных культур.

Как подкормить рассаду нашатырным спиртом?

Подкормка рассады нашатырным спиртом особенно требуется таким культурам, как ревень и баклажаны. Она необходима кабачковым овощным культурам. От подкормки нашатырным цветом зацветут георгины, пионы, клематисы, розы, фиалки, циннии. Средство плодотворно влияет на урожайность ягодных культур. Огурцы, помидоры, свеклу, чеснок, морковь, кукурузу, смородину, крыжовник и яблони менее остро нуждаются в азоте. Поэтому подкармливать их нужно редко.

В этих целях готовится слабый раствор. При выращивании лука пропорции концентрата определяются исходя из целей его применения. Так, для подкормки луковой грядки 3 ст. л. нашатырного спирта разбавляют в 10 литрах воды. Для роста лука на перо его дозировка уменьшается до объема 1 ч. л. Объем воды – 10 л. В целях развития головки лука подкормку делают каждую неделю. Применяется слабый раствор нашатырного спирта.

Как поливать рассаду нашатырным спиртом?

При появлении на помидорах пасынков проводится полив рассады нашатырным спиртом в целях их подкормки. При использовании 10% раствора нашатырного спирта для рассады его пропорции с водой должны быть в соотношении 2 ст. л. на 10 литров. Если же в наличии имеется 25% аммиак, то дозировка будет из расчета 1 ст. л. на 10 л воды. Полив помидоров проводится обязательно под корень культуры.

Подготовленный концентрат распределяется ориентировочно по литру на каждый куст. Процедура полива действует на овощную культуру самым плодотворным образом. Листья помидоров зеленеют, кусты цветут и начинают плодоносить. Аммиак способствует удивительно скорому росту помидоров. Главное – не переборщить с поливами. 2-3 процедур в период начала вегетации томатов хватает. Хорошо растут благодаря поливу концентрата огурцы и капуста. Поливают их всего 2 раза по влажной земле.

Как опрыскивать рассаду нашатырным спиртом?

Опрыскивание рассады нашатырным спиртом желательно проводить хотя бы 5 раз в течение сезона: в апреле-месяце (когда рассада еще не перенесена в огород), в момент ее «переселения» на открытый грунт, на поре цветения, в период плодоношения и после сбора первого урожая. Процедуру нужно проводить в ясную спокойную погоду (когда нет дождей и ветров). Можно опрыскивать растения в вечернее время, при закате солнца.

Нашатырный спирт для рассады от вредителей

Аммиак эффективно защищает растения от многих видов вредителей. Часто применяют нашатырный спирт от тли на рассаде. Также он беспощаден к:

  • долгоносику;
  • дрозофилу;
  • медведке;
  • скрытнохоботнику на луке.

Для защиты растений от долгоносика следует поливать их приготовленным концентратом каждую неделю под корень. Соотношение аммиака и воды должно быть 50 мл на ведро. Процедуру надо проводить до полного уничтожения долгоносиков. Для других вредителей достаточны меньшие дозы аммиака. В основном для борьбы с садовыми насекомыми применяется полив. Для защиты культур от тли необходимо опрыскивание.

В силу своей универсальности нашатырный спирт может применяться для большинства растений. Он эффективен не только для роста растений и повышения их урожайности, но и для защиты от вредоносных насекомых. Это доступное средство применяется в минимальных дозах, поэтому безвредно для растений. Полезен не только их полив нашатырным спиртом, разведенным в воде, но и их опрыскивание данным раствором.

 

применение подкормки для полива рассады томатов, перцев, огурцов, баклажанов, капусты

Основные свойства аммиака для растений

Нашатырный спирт – источник азота. Нехватка этого элемента негативно сказывается на состоянии рассады. Если в открытом грунте баланс можно выровнять за счет внесения в почву компоста или перегноя, то в комнатных условиях уже на стадии выращивания сеянцев приходится регулировать питание растений.

Нашатырный спирт в отличие от органики действует мгновенно, при этом абсолютно не накапливается в тканях растений. Это отличает его от минеральных удобрений (мочевины и селитры), при подкормке которыми возрастает риск концентрации нитратов.

Когда необходимо использовать аммиак для рассады

О нехватке азота можно судить по внешнему виду растений:

  • общая остановка роста;
  • слабые побеги;
  • пожелтевшие листья, остановка процесса фотосинтеза;
  • формирование мелких листовых пластин;
  • деформация бутонов.

Второе назначение нашатырного спирта для растений – профилактика и борьба с вредителями: морковной мухой, проволочником, долгоносиком, тлей.

Нашатырный спирт парализует дыхание вредителей.

Для каких растений подходит

Азотные подкормки нужны всем растениям, но особенно в этом элементе нуждаются:

  • томаты;
  • огурцы;
  • капуста;
  • кабачки;
  • баклажаны;
  • картофель;
  • тыква;
  • розы;
  • георгины;
  • петуньи.

Реже аммиаком поливают:

  • морковь;
  • чеснок.

Только по показаниям:

  • салат;
  • редис;
  • лук.

Бобовые культуры не нуждаются в азоте.

Преимущество подкормок нашатырным спиртом

  • Моментальная реанимация растений.
  • Возможность использования на разных стадиях развития растений без накопления нитратов.
  • Дезинфекция как профилактика болезней.
  • Экологичное средство без передозировки для растений.

Недостатки

Главный недостаток аммиачной подкормки – закисление грунта. В некоторых источниках можно встретить мнение, что нашатырь наоборот ощелачивает грунт, однако, это миф.

Аммиачная форма азота при попадании в почву становится нитратом, образуются соляная, серная и азотная кислоты, которые и являются причиной закисления грунта. Результат – ожог корней растения.

Как разводить нашатырный спирт

Для каждой культуры – своя дозировка аммиачного удобрения. Стандартно же, если нет особых рекомендаций, в 10 литрах воды разводят 3 ст.л. спирта (10%), тщательно перемешивают и используют без последующего разведения для полива.

Периодичность – 1 неделя.
Срок годности разведенного состава – 1 сутки.

Для обеззараживания грунта пропорции другие:

  • 10 л воды;
  • 10 мл нашатырного спирта.

Увлажнение проводят минимум за сутки до посева семян или пересадки сеянцев.

Общие рекомендации по использованию нашатырной подкормки

Аммиак используют для подкормки плодово-овощных культур уже на стадии рассады. Молодые сеянцы активно расходуют азот из грунта, поэтому уже через 2 недели после появления всходов рекомендуют провести первую подкормку нашатырем.

Вторая подкормка – спустя неделю после пересадки в грунт. Третья – еще через 20 дней.

Важно: подкормка нашатырным спиртом должна быть преимущественно под корень. Листовое опрыскивание – по показаниям.

Если нашатырный спирт используется для борьбы с вредителями, то концентрацию увеличивают до 1 ст.л. на 10 литров воды.

Рекомендации по культурам

Томаты

Наиболее нуждаются в подкормке азотом томаты, так как на начальных стадиях роста сеянцы активно выбирают этот элемент из грунта, что приводит к его обеднению.

  1. Первый раз аммиачным раствором сеянцы опрыскивают через 2 недели после всходов. Удобрения готовят из расчета 1 ч.л. спирта на 1 литр воды. Обязательно уделяют внимание тыльной стороне листьев.
  2. Если растения не испытывают азотного голодания, то первая подкормка должна быть прикорневая через 2 недели после пикировки. Средство разводят в соотношении 15 мл (15%) аммиака на 5 литров воды. Поливают строго под корень и только по влажному грунту, стараясь не попасть на стебель и листья.
  3. Вторая подкормка будет при пересадке рассады в грунт. Для этого удобрение разводят по классической схеме 10 мл спирта на 10 литров воды. Используют свежеприготовленный состав из расчета 500 мл средства на каждый куст. Повторно – через 10 дней.

Такая подкормка поможет сеянцам адаптироваться к новым условиям.

Огурцы

Огурцы считаются одной из самых капризных культур. Регулярная подкормка азотом рассады огурцов способствует поднятию иммунитета растений и является залогом хорошего урожая.

Аммиачным раствором рекомендуют обрабатывать не только всходы, но и семена, чтобы задать им «темп роста». Перед посевом на каждое семечко необходимо нанести каплю раствора нашатырного спирта (10%), приготовленного по стандартному рецепту.

Аммиак размягчает оболочку семени.

После появления на рассаде первой пары настоящих листочков проводят прикорневую подкормку. Для этого разводят 1 ч.л. спирта в 3 литрах воды и поливают сеянцы по влажному грунту.

После пересадки в грунт, когда каждый кустик пустит боковые побеги, снова проводят подкормку нашатырем, используя раствор в той же пропорции. Периодичность – раз в 10 дней.

Огурцам достаточно 3-разового удобрения нашатырным спиртом, после чего кустики начинают подкармливать составами на основе калия и фосфора.

Перцы

Перец считается очень нежным растением, поэтому опытные огородники советуют повременить с подкормкой его рассады до формирования 4-го настоящего листочка. Удобряют в два этапа:

  • прикорневое внесение раствора 1 ч.л. на 1 литр воды с избеганием попадания удобрения на вегетативную массу;
  • вторая подкормка сразу после высадки в грунт. Разводят 3 ст.л. спирта на ведро воды. Вносят исключительно под корень.

Для борьбы с тлей:

  • 50 мл нашатыря;
  • 1 литр воды;
  • 100 г тертого хозяйственного мыла.

Этим средством опрыскивают перец, особое внимание уделяя экземплярам с закрученными листьями.

Баклажаны

Баклажаны очень остро реагируют на нехватку азота. Если рассада недополучит этот элемент, то под угрозой может оказаться весь урожай. Обработку сеянцев баклажанов проводят перед самой высадкой их в открытый грунт.

Для этого рассаду поливают под корень раствором аммиака в соотношении 1 ч.л. спирта на литр воды.

Капуста

На нашатырные подкормки отзывчивы все сорта капусты. Первый раз удобрением в концентрации 1 ст.л. спирта на 10 литров воды поливают уже достаточно окрепшие сеянцы за 1,5-2 недели до их пересадки. Чтобы усилить эффект, в раствор добавляют сульфат калия.

Для полива используют по 150-200 мл под каждый кустик. Поливают по влажному грунту. Такая подкормка не только повышает иммунитет сеянцев, но и является профилактикой от насекомых, атакующих неокрепшие растения.

Последний раз подкормить нашатырным спиртом капусту можно в период завязи кочанов. Пропорции – 100 мл аммиака на 10 литров воды.

Лук и чеснок

Лук и чеснок редко испытывают азотное голодание, однако если молодые растения начинают отставать в развитии, проводят обработку раствором аммиака либо по листу, либо под корень.

Для опрыскивания нашатырь разводят в пропорции 3 ст.л. (10%) спирта на 10 литров воды. Используют одномоментно сразу после разведения. Опрыскивание показано для восстановления растения при азотном голодании, а также для профилактики хлороза.

Меры предосторожности

Обращаться с аммиаком надо крайне аккуратно. Нашатырный спирт считается медицинским препаратом, однако в большой концентрации может нанести вред здоровью.

  1. При разведении спирта необходимо работать в медицинских перчатках.
  2. Избегать попадания на кожу неразбавленного водой аммиака.
  3. При обработке растений надевать маску-респиратор.
  4. Защищать глаза при опрыскивании.
  5. Избегать попадания удобрения на вегетативные органы растений, особенно, если раствор готовится для прикорневого внесения.

Важно: стандартно для приготовления удобрения берут нашатырь 10%, если используют 15% или 25% раствор, то концентрацию меняют пропорционально.

Подкормка рассады нашатырным спиртом: рецепты использования для разных растений

Ранней весной, когда на подоконниках стройными рядами выстраиваются многочисленные контейнеры, горшочки и стаканчики с рассадой декоративных и овощных культур, у садоводов-огородников начинается горячая пора: каждый росток нужно обиходить, подсветить, полить и «угостить» каким-нибудь питательным суперсредством для быстрого роста. В ход идут и готовые удобрения, и подручные средства. Из последних в работе с рассадой хорошо зарекомендовал себя нашатырный спирт – недорогой аптечный препарат, способный не только «встряхнуть» человеческий организм, но и привести в чувство поникшие ослабленные сеянцы.

Свойства препарата

Аммиачная настойка представляет собой азотистое соединение, а этот химический элемент, как известно, является одним из основных «продуктов питания» большинства представителей земной флоры. В качестве главного источника азота в огородном деле обычно применяется органика: птичий помет, навоз, перегной, компост, однако при использовании этих удобрений полезная составляющая становится доступна растениям только после ее переработки почвенными бактериями и грибками. Сиюминутно потребность в азоте помогают удовлетворить мочевина (карбамид) и аммиачная селитра, которые при необходимости можно успешно заменить нашатырным спиртом. Интересен тот факт, что чрезмерное внесение азотсодержащих минеральных удобрений может привести к накоплению в плодах нитратов, тогда как аммиачный азот в растительных тканях не задерживается.

Обратите внимание: во всех рецептах указывается количество 10%-го нашатырного спирта – именно в такой концентрации препарат продается в аптеках. Если для приготовления питательных растворов вы планируете использовать технический 25%-й раствор, его дозировку следует сократить в 2,5 раза.

Показания к применению

Если рассада страдает от недостатка азота, вы легко это заметите по ее внешнему виду, по следующим признакам:

  • желтизне и бледности нижних листьев;
  • мелкому размеру листовых пластин;
  • истончению и хрупкости побегов;
  • остановке в развитии;
  • отсутствию или деформации бутонов.

Заметили тревожные симптомы? Тогда действовать нужно незамедлительно, поскольку длительное азотное голодание может привести к снижению урожайности плодово-овощных культур примерно на треть, а недокормленные азотом декоративные растения будут выглядеть не так роскошно, как хотелось бы.

Какие растения подкармливать

По степени потребления азота садово-огородные растения можно условно разделить на несколько категорий:

  • Большими любителями ценного элемента являются капуста, кабачки, тыквы, баклажаны, ревень, картофель, а также цветущие культуры – циннии, петунии, настурции, клематисы, георгины, пионы, розы. Нашатырным спиртом перечисленные растения можно подкармливать как в процессе роста, так и во время цветения.
  • Культурами со средним потреблением азота являются огурцы, помидоры, свекла, морковь, кукуруза, чеснок. Аммиачным раствором их «угощают» реже, чем растения предыдущей категории.
  • К растениям с низким потреблением азота относятся лук, редис, листовые овощи. Азотсодержащие удобрения под них вносят только в случае необходимости.

А вот сеянцы гороха, бобов, фасоли подкармливать нашатырем не нужно вовсе. Растения семейства бобовых находятся в прочном симбиозе с азотфиксирующими бактериями и, получая ценный элемент из окружающего воздуха, накапливают его в подземных клубеньках.

Подкормка рассады

На ранних стадиях развития сеянцы многих плодово-овощных культур потребляют азот особенно активно, поэтому подкормка аммиачным раствором им придется по душе:

  • Рассаду томатов рекомендуется удобрять нашатырным спиртом не раньше чем через 15 дней после появления всходов. Для приготовления «живой воды» 1 ч. ложку препарата разводят в 1 л воды и обрабатывают полученным составом ослабленные растения по листьям. Под корень молодых помидоров аммиак вносится при пересадке в грунт. Делается это так: 10 мл нашатырного спирта добавляют в 10 л воды, и проливают каждую лунку 0,5 л раствора. Благодаря процедуре сеянцы быстрее адаптируются к новым условиям. Повторить подкормку можно через 7–10 дней. По такой же схеме удобряют сеянцы перца и баклажанов.
  • Огуречную рассаду «потчуют» аммиаком с началом роста боковых побегов. Питательный раствор готовят из 0,5 ч. ложки препарата и 1,5 л воды. В первое время подкормки осуществляют еженедельно, но потом перерыв между процедурами сокращают до 3–4 дней. Постепенно повышают и концентрацию удобрения: на тот же объем воды берут 1,5 ч. ложки аптечного аммиака.
  • Благодарно отзывается на подкормку нашатырем рассада всех видов капусты, аммиачный азот она усваивает лучше органического. При пересадке сеянцев этой культуры в каждую лунку выливают по 0,5 л аммиачного раствора (10 мл / 10 л). Нашатырь не только поддержит силы пересаженных растеньиц, но и отпугнет почвенных паразитов. На стадии формирования кочанчиков капустные грядки поливают аммиачным раствором (100 мл / 10 л) из лейки с насадкой-рассекателем.
  • В отличие от капусты клубника предпочитает органический азот, поэтому нашатырным спиртом ее обрабатывают в целях защиты от болезней и вредителей: с появлением первых листочков перезимовавшие кустики опрыскивают раствором препарата (40 мл / 100 л). Процедуру проводят 2–3 раза за лето.
  • Рассаде садовых цветов показаны как корневые, так и внекорневые подкормки нашатырным спиртом. Для полива цветника на 10 л воды берут 25 мл препарата, для опрыскивания – 1 ч. ложку на 1 л воды. Подкормку проводят несколько раз за сезон.

Кроме того, аммиак можно использовать для защиты посадок от всевозможных вредителей. Для этого 100–200 г стружки хозяйственного мыла заливают 10 л горячей воды, добавляют 100 мл нашатырного спирта и хорошо перемешивают. Готовой эмульсией обрабатывают посадки в период формирования завязей и созревания плодов, когда использовать химические инсектициды категорически запрещено.

Правила работы с препаратом

Нашатырный спирт – далеко не безобидное средство, поэтому при работе с ним необходимо придерживаться определенных правил:

  • Из-за летучести аммиака питательный раствор на его основе быстро теряет свойства, поэтому готовить его впрок и хранить не имеет смысла.
  • Внекорневую подкормку растений нашатырным спиртом осуществляют в прохладную пасмурную погоду, а также в утренние или вечерние часы, когда за окном нет яркого солнца.
  • Во избежание ожогов корней аммиачным раствором рассаду поливают сразу после обильного увлажнения почвы.

Имейте в виду, что аммиак токсичен! Продолжительное вдыхание его паров приводит к мигрени, головокружению, потере сознания и ухудшению общего состояния, а попадание концентрированного раствора на незащищенную кожу может вызвать сильнейший химический ожог. Чтобы не поплатиться за реанимацию зеленых питомцев собственным здоровьем, не забывайте о соблюдении техники безопасности: работайте с нашатырным спиртом в респираторе и перчатках, а по завершении процедур стерилизуйте инвентарь и тщательно мойте руки с мылом.

Дата: 11.01.2019.

Нашатырный спирт 1л Рейх 1/12

110 р.

Нашатырный спирт – это разбавленный 10% раствор аммиака, его применение – самый простой и доступный способ обеспечить насаждения этим ценным элементом. Результаты таких обработок заметны практически сразу, азот мгновенно проникает в ткани растений.
Способы применения нашатырного спирта в саду и огороде
Азот для растений – самый основной элемент в рационе питания. Для того, чтобы любые растения (комнатные, садово-огородные, даже злаковые на полях) активно росли, развивались, увеличивали зеленую массу, активно цвели и плодоносили, им необходим азот. Самой доступной формой для поглощения азота является нитрат аммония или нашатырный спирт (Nh5Cl).
Нашатырь – это раствор аммиака, в котором азот находится в виде соединения нитрат аммония – Nh5Cl. В окружающей природе азот чаще всего встречается в виде таких химических форм, как амидная Nh3+, аммиачная Nh4, аммонийная Nh5+, нитритная NO2-, нитратная NO3-, которые в результате естественного кругооборота в природе переходят из одной формы в другую под воздействием на них бактерий и микроорганизмов.
Как известно, растения очень быстро поглощают нитраты в любом количестве, а вот азот в виде аммиака им не очень нравится. Вернее сказать, азот в таком виде не способен накапливаться в тканях растений, поэтому, подкармливая фрукты, овощи или цветы нашатырем, можно не бояться перенасыщения аммиаком.
Для того чтобы органические удобрения наконец-то насытили растения таким необходимым им азотом, должен пройти процесс разложения органики (навоза, помета) при помощи микроорганизмов. Аммиак же переходит в доступные для поглощения растениями формы непосредственно, без участия каких-либо микроорганизмов извне.
Польза для сада и огорода
Азот является основным источником питания для растительных организмов. Ярко-зеленая пышная крона, обилие цветов, а затем и плодов, активное вегетативное развитие – все это зависит от содержания азота в почве, так как растения способны брать его только из почвы (в воздухе до 78% азота в недоступной для растений форме).

О нехватке азота подскажет состояние ваших питомцев:
пожелтение, бледность нижних листочков на рассаде и взрослых растениях;
тоненький, слабый стебелек и мелкие листочки;
задержка роста, отсутствие цветков;
слабый иммунитет – пониженная устойчивость к заморозкам.
Нехватка азота в период развития приведет к значительной потере урожая.
В этом случае требуется немедленная подкормка растений азотом. Чтобы не перенасыщать их селитрой, которую они накопят в своих плодах и тканях, лучше всего внести в почву нашатырный спирт.
Раствор аммиака как удобрение
В большом содержании азота в почве для активного развития и плодоношения нуждаются пасленовые культуры: картофель, баклажаны, а также перец, капуста, тыква и кабачки. Из плодово-ягодных культур: ежевика, малина, вишня и слива очень хорошо реагируют на подкормки нашатырным спиртом. Их необходимо обрабатывать несколько раз в период начала вегетации, формирования бутонов и цветения.
Розы, пионы, георгины, клематисы, фиалки, циннии и настурции порадуют вас своим роскошным цветением. Они просто обожают подкормки азотом в виде аммиачного раствора.
Морковь, свекла, огурцы, помидоры, кукуруза, чеснок, смородина и крыжовник, яблоня и цветы-однолетки довольствуются небольшим содержанием азота в почве.
В умеренном количестве потребляют азот редис, лук, груша, а также луковичные цветы. А вот бобовые вообще не нуждаются в дополнительных подкормках – они способны поглощать азот из воздуха и накапливать его на клубеньках корней, обогащая почву для других растений.
Максимально допустимый раствор (сильной концентрации) – 1 чайная ложка на 1 л воды.
Универсальный раствор азотистой подкормки любых овощных и плодовых культур – 50 мл нашатыря на 4 л воды. Для приготовления слабого раствора разводят 1 столовую ложку средства в 10 л воды.
Плодовые деревья, кусты, многолетние цветы поливают универсальным раствором 2-3 раза за сезон. Помидоры подкармливают 1 раз в неделю, начиная с минимальных доз и постепенно увеличивая концентрацию. Под огурцы в начале формирования завязей вносят раствор 2 столовых ложки на 10 л воды.
Для получения пышной зеленой стрелки лука его поливают высоко концентрированным раствором (1 чайная ложка на 1 л воды). А чтобы получить хороший урожай крупноголового лука и чеснока, 1 раз в неделю их поливают слабым раствором средства.
В качестве профилактики все овощи, ягодные кусты, фруктовые деревья и цветы 1 раз в 7-10 дней поливают под корень слабым раствором нашатырного спирта – 1 столовая ложка на 1 ведро воды. Постепенно дозу можно увеличивать, если растения нуждаются в этом.
Подкормки аммиаком очень благотворно сказываются на рассаде помидоров, перца и капусты, которые производят через 2 недели после пикировки. При высаживании в открытый грунт в каждую лунку наливают по пол-литра смеси (10 мл/10 л воды) – это служит и подкормкой и отлично борется с медведкой.
Дополнительная обработка клубники в весенний период проводится для улучшения качества урожая и средство защиты от вредителей.
Для получения максимального эффекта обработку проводят трижды за сезон:
После таяния снегов почву поливают для уничтожения инфекций и личинок вредителей, перезимовавших на участке. Также для укрепления растений, в качестве дополнительного источника питания. Процедура способствует обогащению клубники необходимым азотом. Ослабленные после зимы растения активно идут в рост.
Во время цветения. Слабым раствором поливают грунт возле кустов. Более концентрированным составом опрыскивают растения.
После уборки урожая. Для укрепления растений и восстановления после периода плодоношения опрыскивают и обильно поливают грядки с клубникой.
Подкормка клубники весной нашатырным спиртом не только укрепляет ослабленные кусты и обеспечивает их необходимыми элементами, но и обеспечивает защиту от вредителей на весь будущий период вегетации.
Борьба с вредителями
Запах нашатырного спирта влияет на очень многих вредителей, даже в неощутимой для человека концентрации. Его успешно применяют против таких насекомых, как:
муравьи;
медведка;
проволочник;
долгоносик;
гусеницы бабочек;
слизни и улитки;
тля, мошки на комнатных растениях;
капустная, луковая и морковная мухи.
Резкий запах средства отпугивает очень многих вредителей и насекомых, поэтому обработка нашатырем является великолепным средством борьбы с ними.
Использование нашатырного спирта при высаживании рассады отпугивает медведку. В лунки вносят по пол литра раствора: на 10 л воды добавляют 10 мл нашатыря.
Существует несколько методов борьбы, позволяющих защитить растения от муравьев в саду. При обнаружении сформировавшегося муравейника на участке, его обильно проливают концентрированным раствором: на 5 литров воды добавляют 5 ст. ложек аммиака.
Еще один эффективный способ: муравьиную кучу накрывают тряпками, пропитанные нашатырем, сверху кладут полиэтиленовую пленку. Сильный резкий запах отпугнет вредителей, а защитный верхний слой не позволит парам испариться долгое время.
Для профилактики растения опрыскивают слабым раствором: 10 л. воды на 2 ст. ложки нашатыря. Для улучшения сцепления с листвой в раствор добавляют жидкое мыло или раствор из хозяйственного мыла.
Главным источником питания муравьев является тля. С ней тоже борются с применением нашатыря. Для профилактики такой способ практикуется на приусадебных участках, садах и огородах на протяжении всего сезона, начиная с ранней весны.
Обработка сада от тли нашатырным спиртом начинается рано, до набухания почек, с первыми признаками пробуждения растений. Этот метод способствует увеличению зеленой лиственной массы, соцветий и плодов, гарантирует хороший урожай.

Для этого готовят мыльный раствор: 100-200 г хозяйственного мыла натирают на мелкой терке, растворяют в 1 л горячей воды, а затем постепенно, тщательно перемешивая, добавляют в 10 л обычной воды, 50 мл 25%-ного нашатыря. Полученным раствором опрыскивают плоды на деревьях, листья, капусту, помидоры, огурцы – одним словом, все нуждающиеся в обработке культуры. Это не только отпугнет вредителей, ос и жуков, но и будет хорошей внекорневой подкормкой для растений.
Мыло в раствор добавляют для того, чтобы раствор лучше прилипал к листьям, а перед употреблением фрукты достаточно просто тщательно помыть проточной водой.
Чтобы избавиться от мух и муравьев, можно поливать грядки слабым раствором (профилактическая подкормка окажет комплексное воздействие).

Внимание! Резкий запах нашатыря и его пары, при несоблюдении элементарных мер защиты, может оказаться опасным:
резкое вдыхание может вызвать остановку дыхания, поэтому растворы лучше смешивать в хорошо проветриваемых помещениях;
у людей, страдающих гипертонией, может вызвать резкое повышение давления;
нашатырный спирт – лекарственный препарат и его ни в коем случае нельзя смешивать с хлорсодержащими веществами;
во избежание ожогов предостерегаться от попадания средства на кожу и слизистые оболочки.
При правильном использовании, соблюдении пропорций и правил, нашатырный спирт станет вашим незаменимым помощником и другом для растений. Они непременно отблагодарят вас здоровым внешним видом и богатым урожаем.

Будет ли аммиак убивать растения снаружи? | Home Guides

Аммиак абсолютно может убить растения на улице, иногда в одночасье, если количество достаточно велико. Садовники, желающие быстро озеленить свой газон, могут испытать соблазн добавить, например, больше, чем рекомендованное количество азотных удобрений, или они могут добавить сильно разрекламированные материалы, такие как куриный помет, которые содержат большое количество аммиака и могут сжигать растения. если сначала не компостировать должным образом. Чтобы этого не произошло, будьте осторожны при добавлении любого материала, содержащего аммиак.

Опасности, связанные с аммиаком

Хотя аммиак необходим для здорового роста растений, слишком много хорошего может привести к смерти. Растения могут проявлять токсичность аммиака в виде обгоревших листьев, почерневших корней или даже гибели. Источники аммиака включают свежий куриный помет, переизбыток химических удобрений или даже многократные дозы мочи животных. Аммиак также может попадать в почву вокруг корней растений из химических удобрений, содержащих аммоний (Nh4 или Nh5 +).

Предотвращение ожогов аммиака

Добавляя неорганические удобрения в свой сад, не добавляйте больше, чем рекомендовано на этикетке удобрения.Это зависит от состава удобрения и времени года: растения находятся в большей опасности, например, когда они не растут активно. При добавлении компоста, особенно если вы используете побочный продукт животного происхождения, такой как богатый питательными веществами куриный помет, добавляйте только хорошо выдержанный, чтобы обеспечить расщепление всех источников азота и, следовательно, аммиака.

Безопасный азот

Неправильное компостирование — один из самых простых способов непреднамеренно сжечь растения. Всегда соблюдайте пропорцию при использовании опасных веществ, например, куриного помета; либо соотношение 1: 1 одной части куриного помета к одной части подстилки и соломы, либо соотношение 2: 1.Если вы хотите добавить в почву природный источник азота без опасности ожога аммиаком, просто оставьте обрезки травы там, где они падают при кошении.

Компост для выдержки для курицы

При добавлении в сад компоста, содержащего материалы, богатые аммиаком, например, куриный помет, обязательно сначала его выдержите. Независимо от того, используете ли вы навоз или просто саженцы растений, создайте кучу размером около кубического ярда и следите за компостной кучей, пока ее середина не достигнет 130–150 градусов по Фаренгейту.Дайте ему постоять при этой температуре в течение трех дней, прежде чем переворачивать стопку, после чего вы должны снова подождать, пока она не вернется к этой температуре. Еще раз переверните через три дня и повторите еще раз. Затем дайте ему постоять от 45 до 60 дней или пока он не станет сладким и не станет черным и рассыпчатым.

Ссылки

Писатель Биография

Сара Мур была писателем, редактором и блоггером с 2006 года. Она имеет степень магистра журналистики.

Садовые путеводители | Влияние бытового аммиака на рост растений

Растения нуждаются в азоте для многих важнейших клеточных функций, включая фотосинтез.По иронии судьбы, хотя азот составляет около 80 процентов атмосферы Земли, его трудно сохранить в почве, где растения могут получить к нему доступ. Обычный бытовой аммиак богат азотом, поэтому некоторые садоводы рекомендуют удобрять растения разбавленными концентрациями этого очищающего средства. К сожалению, растения не могут использовать азот в аммиаке так быстро, как можно было бы ожидать.

Химия аммиака

Химически молекула аммиака представляет собой один атом азота в сочетании с тремя атомами водорода: Nh4.В воздухе аммиак — это газ, но он может растворяться в воде, в таком состоянии он находится как бытовой аммиак.

Аммиак и pH

Термин pH — это научное сокращение от «процентного содержания водорода». Шкала pH в диапазоне от 0 до 14 является логарифмическим измерением этого процента, что означает, что pH 5 означает в 100 раз больше водорода, чем pH 4. На этой шкале меньшие числа обозначают «вкладчиков водорода» в химических реакциях. , то есть кислоты. Большее количество — это «приемники водорода», также известные как основания или щелочи.PH 7 является нейтральным, то есть не является ни кислым, ни основным. Когда кислоты и основания контактируют друг с другом, они реагируют с образованием солей. Аммиак — это основа. Поэтому он будет реагировать с кислотами и нейтрализовать их.

  • Азот нужен растениям для многих жизненно важных функций клетки, включая фотосинтез.
  • По иронии судьбы, хотя азот составляет около 80 процентов земной атмосферы, его трудно сохранить в почве, где растения могут получить к нему доступ.

Аммиак и потребности растений

Сильный запах бытового аммиака — верный признак летучести этого вещества.Аммиак легко улетучивается в виде пара в воздух, что делает практически невозможным оставаться в почве достаточно долго, чтобы корни растений могли его поглотить. Кроме того, большинство растений лучше всего растут в слабокислой среде с диапазоном pH от 6,5 до 6,8. Будучи сильным основанием, раствор аммиака, вылитый непосредственно на растения, сделает окружающую среду более щелочной, что значительно затруднит усвоение растениями определенных минералов. При неблагоприятных условиях pH растения потенциально могут погибнуть.

Роль бактерий

В природе форма азота, наиболее легко фиксируемая в почве и, следовательно, доступная для корней растений, представляет собой нитрат, атом азота, связанный с тремя атомами кислорода, NO3.Однако разложившиеся организмы и отходы животноводства богаты аммиаком, а не нитратами. Аммиак подвергается химическому превращению из Nh4 в N03 в рамках азотного цикла. В азотном цикле животные поедают растения, а затем производят отходы аммиака, которые бактерии превращают в нитраты, потребляемые растениями, которые затем попадают в организм животных, поедающих растения, и т. Д. В бесконечном цикле регенерации и переработки азота. жизнь.

  • Сильный запах бытового аммиака — верный признак летучести этого вещества.
  • Будучи сильным основанием, раствор аммиака, проливаемый непосредственно на растения, делает окружающую среду более щелочной, что значительно затрудняет усвоение растениями определенных минералов.

Два конкретных семейства бактерий работают в азотном цикле. Бактерии Nitrosomona потребляют аммиак и расщепляют его на нитрит, который представляет собой атом азота, соединенный с двумя атомами кислорода. Затем нитробактеры поглощают нитрит и выделяют нитрат, что идеально подходит для нужд растений.

Нитраты и рост растений

Бытовой аммиак не является надежным удобрением для растений из-за его летучести в форме раствора и высокого pH. Большая часть азота будет потеряна с воздухом, а щелочной pH лишит растения некоторых важных минералов, более плотно связывая их с другими соединениями в почве, так что они больше не будут биодоступными для растений.

Если, однако, бактериям удастся работать достаточно быстро, чтобы преобразовать часть аммиака в нитрат, то растения смогут использовать азот, который первоначально был получен из аммиака.Ясно, что растения с достаточным азотом хорошо себя чувствуют. Растения будут темно-зеленого цвета, потому что зеленая светочувствительная молекула, которая управляет фотосинтезом, хлорофилл, использует четыре атома азота. Растения будут пышными и полными, так как азот используется для других жизненно важных функций клетки, включая формирование листьев.

  • Два конкретных семейства бактерий работают в азотном цикле.
  • Затем нитробактеры поглощают нитрит и выделяют нитрат, что идеально подходит для нужд растений.

Управление азотом — предотвращение травм, вызванных аммиаком • farmdoc

Этой весной происходит много безводного аммиака, и на многих полях есть надежда на то, чтобы посадить его как можно скорее после внесения NH 3 . Это поднимает вопрос о возможном повреждении семян и проростков NH 3 .

Повреждение семян и рассады от весеннего внесения NH 3 относительно редко в Иллинойсе, но может быть весьма разрушительным, и мы хотим свести к минимуму вероятность того, что это произойдет.Такое повреждение случается редко, потому что NH 3 легко превращается в почве в форму аммония (NH 4 + ), которая удерживается на участках обмена почвы и не повреждает ткани растений. Если почвы влажные во время внесения и есть нормальные осадки (или, по крайней мере, на дюйм или около того) от внесения NH 3 в течение времени появления и укоренения урожая, вероятность повреждения близка к нулю.

Небольшое количество NH 3 остается в виде свободного аммиака вместо того, чтобы сразу превращаться в аммоний, в основном из-за значительного повышения pH, которое сопровождает превращение аммиака в аммоний.Если посадка неглубокая или почва высыхает, некоторое количество аммиака может попасть в зону посева или укоренения. Если вы чувствуете запах аммиака на поверхности почвы возле ряда во время или после посадки, а почва сухая, его может быть достаточно, чтобы вызвать повреждение. Свободный аммиак очень токсичен для молодых тканей растений, и если семена будут посажены в почвенную зону, где есть аммиак, или в них прорастут корни, это может привести к повреждению. Наиболее частым повреждением является гибель молодых корней, и это может повлиять на урожай, если корневая система не восстановится полностью.

Лучший способ избежать повреждения — это физически разделить NH 3 и посевной материал, поместив NH 3 между рядами или местами рядов. Это возможно с использованием GPS (возможно, RTK) и автоуправления, но это означает, что NH 3 необходимо применять параллельно (не под углом) к рядам, а внесение и посадка должны быть точными, чтобы избежать размещения каких-либо рядов. прямо над полосой аммиака. Если это можно сделать точно, посадку можно производить сразу после, во время или до внесения NH 3 .

Физическое отделение NH 3 от зоны проростков путем размещения NH 3 глубоко может помочь, но не исключает возможность повреждения. Глубокое размещение (от 8 до 10 дюймов) требует больше усилий, и может быть трудно поддерживать однородность глубины по широким пруткам. Глубокое размещение весной также означает внесение в более влажную почву. Благодаря своей очень высокой растворимости NH 3 перемещается на меньшее расстояние от точки выброса во влажных почвах, чем в более сухих.Это увеличивает концентрацию аммиака в почве и увеличивает количество, которое может подняться, если почва высохнет до такой глубины. «Путь», оставленный ножом во влажной почве, более открыт для восходящего движения NH 3 , , и это может увеличить вероятность повреждения растений.

Если невозможно внести NH 3 между (возможными) рядами, то разделение внесения и посадки по времени может снизить вероятность повреждения. Идея состоит в том, чтобы внести NH 3 достаточно рано, чтобы выпало достаточно дождя, чтобы не допустить попадания NH 3 в зону прорастания.Это означает полагаться на вероятности погоды, но не на достоверность; были даже некоторые случаи повреждения растений из-за падения NH 3 . Но шансы на такое повреждение невелики, и если это единственный вариант, то чем дольше вы можете ждать между внесением и посадкой, тем лучше. Старое практическое правило — ждать 1-2 недели между внесением и посадкой — лучше, чем ждать 1-2 дня, но не так хорошо, как ждать месяц. Итак, пока мы понимаем, что ожидание в течение недели или двух снижает, но не устраняет вероятность травмы, это ориентир, с которым мы можем жить.

границ | Воздействие аммиака и аммония на базилик (Ocimum basilicum L.), растущий на органически удобренном торфяном субстрате, и стратегии смягчения связанного с ним вредного воздействия на рост растений

Введение

Наряду с тенденцией к натуральным ароматизаторам продуктов питания, а также заботе о своем здоровье питания, спрос на комнатные травы во многих европейских странах растет (CBI, 2016a). Эти растения растут в органическом субстрате до тех пор, пока они не будут использованы потребителем, и, таким образом, обеспечивают оптимальную свежесть, а также более длительный срок хранения, чем свежесрезанные продукты.Комнатные травы составляют около двух третей от общего объема продаж свежих трав в Германии (Statista, 2018). В этом сегменте рынка базилик ( Ocimum basilicum L.) составляет 50% оборота (CBI, 2016b). Горшечный базилик в теплицах производится круглый год, и около 26% продаваемых товаров соответствует европейским нормам для органического земледелия (EC 834/2007) (AMI, 2018).

По сравнению с традиционным выращиванием, органическое выращивание базилика часто приводит к снижению урожайности и качества.Уже через 1-2 недели после прорастания семядоли могут стать хлоротичными и некротизированными в системах органического производства. В зимний период эти нарушения часто сопровождаются грибковыми заболеваниями, такими как Botrytis (Frerichs et al., 2017). Предыдущее исследование (Frerichs et al., 2019) показало, что аналогичные симптомы можно было вызвать, если базилик скармливался NH 4 + в качестве единственного источника азота, стабилизированного ингибитором нитрификации. Еще больший ущерб появился после внесения органических азотных удобрений.При такой обработке растения подвергались воздействию особенно высоких концентраций NH 4 + в начале периода культивирования, поскольку добавленные органические удобрения быстро минерализовались. Напротив, NO 3 или сбалансированная поставка минерального азота с NH 4 + и NO 3 привела к значительно более высокому производству биомассы без какого-либо ущерба для растений. Об аналогичном влиянии формы N на рост базилика сообщили Kiferle et al.(2013). В целом, эти результаты показывают, что базилик чувствительно реагирует на высокую концентрацию NH 4 + , что хорошо известно для многих видов растений (Britto and Kronzucker, 2002).

Следовательно, мы предположили, что нарушение роста базилика в органическом производстве связано с временным избытком предложения NH 4 + . Этому явлению могут способствовать различные механизмы. Помимо токсичности самого NH 4 + (Liu and von Wirén, 2017), необходимо также учитывать косвенные эффекты, такие как вызванные NH 4 + изменения pH в среде для выращивания.Корни высвобождают протоны (H + ) при поглощении NH 4 + для поддержания стабильного внутриклеточного pH (Van Beusichem et al., 1988). Кроме того, окисление одного моля NH 4 + до NO 3 через нитрит (NO 2 ) нитрифицирующими бактериями дает два моля H + (Sahrawat, 2008). ). Таким образом, удобрение NH 4 + способствует закислению ризосферы (Wiesler, 1997).Однако после внесения органических азотных удобрений кратковременное повышение pH в процессе аммонификации может произойти до того, как образующийся NH 4 + будет преобразован путем нитрификации (Vetanovetz and Peterson, 1990; Niemiera et al., 2014). При повышении pH равновесие NH 4 + / NH 3 смещается в сторону NH 3 . Значительное образование NH 3 начинается при pH около 7,0 (Lægreid et al., 1999). В средах для выращивания, содержащих значительное количество заменителей торфа, таких как компосты и древесные волокна, могут возникать нейтральные или слабощелочные условия.Эти компоненты, часто встречающиеся в органическом производстве горшечных растений, относительно богаты карбонатом кальция (CaCO 3 ) или обладают слабой буферной способностью против щелочных сдвигов (Neumaier and Meinken, 2015). Высокие температуры, типичные для выращивания в теплицах, дополнительно способствуют образованию NH 3 (Lægreid et al., 1999). Известно, что аммиак является фитотоксичным даже при низких концентрациях как в растворенной форме в ризосфере, так и в газообразной форме в среде растительного покрова (Schenk and Wehrmann, 1979; Krupa, 2003).

Чтобы разделить влияние NH 3 и NH 4 + на рост органически удобряемого базилика, необходимо контролировать оба соединения в течение периода выращивания. Процессы диффузии и дрейфа между близко расположенными участками могут затруднить обнаружение точного воздействия NH 3 на отдельных участках (Gericke et al., 2011). Для преодоления этих проблем было разработано несколько подходов (Yang et al., 2018). Быстрый и легко реализуемый метод количественной оценки улетучивания NH 3 даже в небольших сельскохозяйственных культурах — это «метод трубки Дрегера», основанный на использовании детекторных трубок NH 3 в сочетании с динамической камерой. (Пачольски и др., 2006; Пачольский, 2016). Если важна только концентрация NH 3 в окружающем воздухе, как в настоящем исследовании, можно также использовать камеры с открытым верхом (Chen et al., 2012).

Учитывая текущее состояние знаний, мы выдвинули гипотезу, что pH среды выращивания и дозировка органической азотной подкормки являются решающими факторами, влияющими на воздействие NH 3 и NH 4 + на выращиваемые в горшках травы. . Оптимальный начальный диапазон pH субстрата ожидается от 5.5–6.0, чтобы избежать как значительного воздействия NH 3 в нейтральных или щелочных условиях (Lægreid et al., 1999), так и снижения активности нитрифицирующих бактерий в кислых условиях (Vetanovetz and Peterson, 1990; Lang and Elliott, 1991). Концентрация аммиачного азота в готовых к использованию питательных средах может быть дополнительно снижена путем хранения в течение нескольких недель после смешивания органических удобрений с субстратом. За это время легко разлагаемые соединения удобрений могут быть минерализованы в большей степени (Koller et al., 2004; Наир и др., 2011). Для облегчения последующей нитрификации также может быть полезно добавление зрелого компоста (Delics et al., 2017). Таким образом, субстрат будет обогащен хорошо известной популяцией нитрифицирующих бактерий (Chroni et al., 2009; Zeng et al., 2012).

Таким образом, цель настоящего исследования заключалась в изучении воздействия NH 3 и NH 4 + на выращенный в горшках базилик в зависимости от количества органического азота, нанесенного с базовой повязкой, начального pH субстрата как а также различные способы хранения с добавлением зрелого компоста в торфяной субстрат и без него.Были рассмотрены следующие вопросы исследования: (а) В какой степени базилик подвергается воздействию NH 3 и NH 4 + при выращивании на органически удобренных субстратах на основе торфа? (b) Какое влияние оказывает воздействие NH 3 и NH 4 + на рост базилика? c) Какие методы могут быть подходящими для сведения к минимуму вредного воздействия NH 3 и NH 4 + при производстве органического базилика?

Материалы и методы

Всего с сентября 2016 г. по апрель 2017 г. в теплице Оснабрюкского университета прикладных наук было проведено три эксперимента по внесению удобрений (таблица 1).Первые два испытания были сосредоточены на концентрациях NH 3 и NH 4 + в ответ на различные уровни органической азотной подкормки и pH субстрата, а также на развитие молодых растений базилика в этих условиях. Травы выращивали в осенний и зимний периоды в течение 4 и 5 недель после посева соответственно. Третье испытание было проведено для оценки эффективности добавок в компост для снижения фитотоксического воздействия NH 3 и NH 4 + и высокого pH субстрата при высоком уровне заправки на основе органического азота.Здесь растения выращивали в конце зимы / начале весны в течение 8 недель, пока они не достигли товарного размера. Таким образом было также проверено, способны ли растения восстанавливаться после высокого исходного воздействия NH 3 и NH 4 + на стадии проростков. Рост и урожай базилика определяли путем измерения высоты растений и сбора биомассы побегов с недельными интервалами. Одновременно были проанализированы основные параметры субстрата (pH, NH 4 + , NO 3 , NO 2 и общая концентрация водорастворимой соли) и концентрация NH 3 в воздушное пространство купола было определено количественно с использованием подхода с открытой камерой, как описано ниже.

Таблица 1 Обзор экспериментальной установки в трех испытаниях удобрения.

Растительный материал и условия экспериментов

Базилик ( Ocimum basilicum L.) var. «Эдвину» выращивали в горшках диаметром 12 см (0,6 л), заполненных торфяным субстратом. В каждый горшок на поверхность субстрата высевали по 50 семян, покрытых тканью из белого ворса. Через 6 дней семена начали прорастать, и крышку сняли. В первые 15 дней растения поливали дождеванием сверху.В дальнейшем вода и раствор удобрений подавались периодическим заливанием блюдца горшка. Для полива и фертигации использовалась деионизированная вода. Температуру воздуха доводили до 16 ° C / 18 ° C (ночь / день). С 6 утра до 8 вечера. естественная освещенность была дополнена натриевыми лампами высокого давления (44,3 мкмоль м -2 с -1 ), когда освещенность за пределами теплицы упала ниже 370,4 мкмоль м -2 с -1 .

Все эксперименты были выполнены в рандомизированном полном блоке с тремя повторностями, каждая повторность состояла из 25–36 горшков.Каждую обработку и повторение помещали на тепличный стол на расстоянии 0,15–0,25 м друг от друга. Раз в неделю с каждого участка брали по две горшки в соответствии с планом рандомизации. Образцы использовались для измерения концентрации NH 3 в воздушной среде базилика, а также для деструктивного анализа параметров растений и субстрата. После извлечения этих горшков для исследований оставшиеся горшки снова помещали в однородную квадратную сетку внутри участков.Таким образом, густота посевов снизилась с 42 до 25 горшков на м -2 между 1 и 8 неделями после посева.

Состав субстрата и обработка

Среда для выращивания была основана на смеси белого и черного торфа [80% и 20% (об. / Об.) Соответственно, Klasmann-Deilmann, Geeste, Germany] с насыпной плотностью 298 г. L -1 и исходная концентрация N 9 мг NH 4 + -N (L субстрат) -1 . Он был покрыт известью в соответствии с желаемым уровнем pH субстрата.Помимо извести, за двенадцать дней до посева в субстрат добавляли удобрение с микроэлементами Radigen ® (Terraflor GmbH, Изерлон, Германия) и фосфорные (P) удобрения. Конечная смесь субстратов свободно хранилась в ведре при температуре 18–22 ° C с содержанием влаги, доведенным до 49% и 47% (об. / Об.) Влагоемкости в соответствии с DIN EN 13041 (2012) в экспериментах 2 и 3 соответственно. В эксперименте 1 подложки использовались сразу после смешивания.

Регулировка исходного pH субстрата

Субстрат покрывали известью карбонатом кальция (CaCO 3 ), чтобы установить pH субстрата, равный 5.5 (таблица 1) во время посева. PH субстрата 6,5 был достигнут добавлением как CaCO 3 , так и оксида кальция (CaO). Таким образом были реализованы условия как для низкого, так и для высокого потенциала улетучивания NH 3 .

Поправка к компосту

В третьем эксперименте 5% (об. / Об.) Зрелого компоста из зеленых отходов добавляли к торфяному субстрату за 1 день (обработка 9) или 12 дней (обработка 8) до посева (Таблица 1). Компост характеризовался pH 7.9 (экстракция CaCl 2 ), общая концентрация водорастворимой соли 1,28 г KCl (L субстрат) -1 и насыпная плотность 440 г (L субстрата) -1 . Концентрации нитратов и NH 4 + в компосте составляли 22 и 97 мг N (L субстрата) -1 соответственно.

Спрос и предложение питательных веществ

В соответствии с рекомендациями Линднера и Биллманна (2006) общая потребность в 1125 мг N, 196 P и 448 калия (K) на литр субстрата была оценена для всего периода выращивания органически культивируемого базилика. .При расчете потребности в удобрениях учитывалось содержание доступных для растений питательных веществ в торфе и компосте.

Подача азота

В экспериментах 1 и 2 были установлены две нормы внесения органических азотных удобрений [250 и 750 мг N (л субстрата) -1 ] в сочетании с двумя начальными уровнями pH (5,5 и 6,5) для реализации различные уровни воздействия NH 3 и NH 4 + (Таблица 1). Более высокая доза азота соответствует верхнему диапазону удобрений, рекомендованному для базилика, который подкармливается исключительно базовой подкормкой.Это ограничение помогает предотвратить вредное воздействие на развитие проростков из-за высоких концентраций солей в субстрате, особенно в зимнее время (Eghbal, 2017). Более низкая доза азота обычна при производстве органического базилика, когда базовая подкормка дополняется повторными подкормками в период выращивания.

Доступный азот растений был получен с помощью жидкого аминокислотного удобрения (AAF), полученного из ферментативно гидролизованных белков животного происхождения [Fontana 9-0-0, MeMon B.V., Арнем, Нидерланды].Используемая партия состояла из 8,8% (мас. / Об.) N и 54% (мас. / Об.) Органического вещества (ОМ). Отношение C / N в удобрении составляло 4. Предыдущие испытания инкубации показали, что около 45% органического азота трансформировалось в NH 4 + в течение 5 дней после смешивания AAF с торфяным субстратом. В течение 20 дней инкубации не наблюдалось образования NO 3 в результате нитрификации. Таким образом, AAF оказался подходящим источником азота для обеспечения высокого воздействия аммиачных форм азота (NH 4 + и NH 3 ) в течение первых недель выращивания растений.Для базовой подкормки при посеве подавали питательный раствор, содержащий АКФ. В эксперименте 3 были необходимы дополнительные подкормки, которые осуществлялись путем многократного орошения субстрата раствором AAF [125 мг N (L субстрат) -1 ] через 45, 50 и 55 дней после посева. В соответствии с ростом свежего вещества растений, который в основном определяет потребность сельскохозяйственных культур в азоте, от 250 до 375 мг N (л субстрата) -1 было внесено путем подкормки. Подкормки не применялись, когда рост трав был сильно ограничен (Таблица 1).В контрольной обработке, которая была включена во все эксперименты, азот подавали тетрагидратом нитрата кальция [Ca (NO 3 ) 2 • 4 H 2 O pro analysi (Merck KGaA, Дармштадт, Германия)] для достижения максимальной скорости роста базилика в соответствующих условиях испытаний. Из литературы хорошо известно, что производство биомассы базилика является оптимальным с преобладающим поступлением NO 3 -N (Kifferle et al., 2013; Frerichs et al., 2019). Общая норма внесения азотных удобрений при контрольной обработке была ниже, чем при органических обработках, из-за того, что минеральный азот полностью фитодоступен, тогда как органические азотные удобрения обычно выделяют не более 60-70% общего содержания азота в виде минерального азота (NH 4 + и NO 3 ) в течение примерно 8 недель (Hartz and Johnstone, 2006; Stadler et al., 2006).

Обеспечение фосфором (P) и калием (K)

Для фосфатных удобрений [12.7% (мас. / Мас.) P], просеянное на ультрацентробежной мельнице через сито с размером ячеек 200 мкм, использовали в первых двух экспериментах. Во втором эксперименте относительно небольшие и темно-зеленые листья наблюдались на растениях обработки 4 с исходным pH субстрата 6,5 и базовой подкормкой 250 мг N (L субстрата) -1 . Эти симптомы могут указывать на возникновение дефицита фосфора (Gibson et al., 2007). Поэтому в третьем эксперименте тип удобрения P был изменен на микрогранулированную костную муку [DCM ECO-FOS, 10.0% (мас. / Мас.) P, 4,0% (мас.) N, Deutsche CUXIN Marketing GmbH, Оттерндорф, Германия]. Это удобрение P часто используется в производстве органического базилика, и считалось, что оно обеспечивает достаточное количество фосфора в этих условиях выращивания. Калий подавали в виде сульфата (K 2 SO 4 pro analysi , Merck KGaA, Дармштадт, Германия) через заливку субстрата в день посева.

Дополнительная подача питательных веществ

Для уменьшения дефицита фосфора, который появился при контрольной обработке эксперимента 3, все растения в этом эксперименте дополнительно орошали моногидратом дигидрофосфата кальция [Ca (H 2 PO 4 ) 2 • H 2 O] при дозировке 17.4 мг P (L субстрат) -1 через 33 дня после посева. В эксперименте 1 молодые листья базилика в обработке 5 [исходный pH субстрата 6,5; 750 мг AAF-N (L субстрат) -1 ] показало желтоватое изменение цвета в последние дни культивирования. Эти симптомы могут указывать на возникновение дефицита железа (Fe) (Bergmann, 1993; Gibson et al., 2007). Чтобы избежать связанных ограничений роста, через 2 и 3 недели после посева добавляли питательные микроэлементы путем верхнего орошения, каждый раз по 50 мл на горшок с 0.25 г L -1 Flory 10 (ProfiFlor GmbH, Пульхейм, Германия) в экспериментах 2 и 3 соответственно.

Анализ субстратов и измерение параметров растений

Для приготовления образцов субстрата весь субстрат из двух горшков на участок и дату отбора проб гомогенизировали, а его аликвоту использовали для анализа. Еженедельно отбирали пробы субстрата после обработки органическими удобрениями для определения концентраций NH 4 + , NO 3 и NO 2 (экстрагированные с 0.0125 M CaCl 2 ), а также pH субстрата (0,01 M CaCl 2 ). Образцы контрольных обработок отбирали в начале и в конце испытательного периода, в эксперименте 3 также в промежуточный срок. Общую концентрацию водорастворимой соли измеряли в эксперименте 1. В эксперименте 3 определяли концентрацию экстрагируемого фосфора хлорида кальция / DTPA (CAT). Подготовка всех образцов субстрата проводилась в соответствии с рекомендациями Ассоциации немецких сельскохозяйственных аналитических и научно-исследовательских институтов e.В. (ВДЛУФА) (Hoffmann, 1997). Последующие анализы субстрата проводили с использованием ионоселективных электродов для определения NH 4 + , pH субстрата и общей концентрации водорастворимых солей (стандартный аммиачный электрод Thermo Orion, корпорация Thermo Electron, США; Feld-pH-Meter , pH / cond 340i, Xylem Analytic Germany Sales GmbH & Co. KG, WTW, Вайльхайм, Германия). Для обнаружения NH 4 + почвенный экстракт был забуферен до pH> 11 с помощью 2% регулятора ионной силы аммиака (Thermo Fisher Scientific, США).Ионная хроматография использовалась для обнаружения NO 3 (Compact IC plus 882, Deutsche Metrohm GmbH Co. KG, Filderstadt, Германия), рефлектометрия для обнаружения NO 2 (RQflex ® plus 10 и Reflectoquant ® тест-полоски, Merck KGaA, Дармштадт, Германия), а также спектрофотометрия (Specord 40-400189, Analytik Jena AG, Йена, Германия) для обнаружения PO 4 3- на основе реакции молибденового синего в соответствии с Метод ВДЛУФА A 13.1.1 (Hoffmann, 1997). За развитием растений следили, определяя количество растений, выход свежего вещества побегов и высоту растений (расстояние от поверхности субстрата до кончика самого длинного побега) в каждом горшке.

Воздушный NH

3 Измерения и соответствующие методологические оценки

Концентрация NH 3 в воздушной среде выращенного в горшках базилика была определена с использованием метода открытой камеры. Базовая конструкция и принципы работы были адаптированы из системы измерения поля, описанной Pacholski et al.(2006). Каждый измерительный блок состоял из двух камер из полиэтиленовых (ПЭ) труб. Обе камеры были соединены гибкими полиэтиленовыми трубками, прикрепленными коллектором к ручному сильфонному насосу (Accuro-Balgpumpe, Drägerwerk AG & Co. KGaA, Любек, Германия), который служил устройством для отбора проб воздуха (рис. 1). Для измерения NH 3 в каждую камеру переносили по одному горшку с базиликом. Входная сторона трубок была помещена на поверхность подложки (рис. 2А). Пробы воздуха отбирались с помощью ручного насоса и пропускались через детекторную трубку NH 3 (Dräger-Tube ® Ammoniak 0.25 / a, Drägerwerk AG & Co. KGaA, Любек, Германия) (Рисунок 1). За 10 ходов откачки, на которые требуется около 1 мин, через насос и индикаторную трубку было всосано 1000 мл воздуха. Концентрация NH 3 в отобранном воздухе сразу отображалась на шкале детекторной трубки голубым продуктом реакции. Впоследствии показания были скорректированы до стандартного атмосферного давления (1013 гПа). Измерения аммиака проводились дважды в день: на восходе солнца и в начале дня для обнаружения NH 3 при самой низкой и самой высокой дневной температуре соответственно.Оба измерения были усреднены для дальнейшего анализа данных. С помощью описанной процедуры были обнаружены концентрации NH 3 от 0,250 до 3,000 частей на миллион. Удвоив количество ходов откачки до 20, можно было достичь диапазона измерения 0,125–1,500 ppm. Чтобы избежать перекрестного загрязнения при проведении измерений NH 3 , использовались отдельные системы камер для каждой обработки. Аналогичным образом перед каждым измерением пробирки для отбора проб промывали 500 мл воздуха.

Рис. 1 Система измерения аммиака состояла из камер с открытым верхом, которые были соединены с пробоотборными трубками NH 3 , детекторной трубкой NH 3 и ручным сильфонным насосом.

Рис. 2 Трубка для отбора проб аммиака, помещенная на поверхность подложки внутри камеры с открытым верхом (A) ; Кислотная ловушка, используемая в качестве пассивных пробоотборников NH 3 (пластиковые емкости с вискозной подушечкой) (B) .

Предварительные исследования воспроизводимости измерений NH 3 показали, что коэффициент вариации колеблется от 8% до 12%, когда концентрация NH 3 превышает 0,250 ppm. При более низких концентрациях NH 3 коэффициент вариации существенно увеличивается.При постоянных условиях по температуре и облучению время помещения (0–15 мин) горшков в камеру с открытым верхом не влияло на обнаруженную концентрацию NH 3 . Для дальнейших методологических оценок, обогащение NH 3 в среде базилика под пологом было определено двумя дополнительными методами: а) кислотными ловушками, используемыми в качестве пассивных пробоотборников NH 3 и б) расчетным подходом, основанным на NH 3 / NH . 4 + равновесие в растворе питательной среды.Кислотные ловушки были сделаны аналогично тому, как описано Shigaki and Dell (2015), из пластиковых чаш (диаметр: 10 см), заполненных 0,05 M H 2 SO 4 . Для поглощения атмосферного NH 3 ловушки помещали на 24 часа на поверхность подложки (рис. 2В). Вискозную подушку, помещенную в пластиковую емкость, использовали для увеличения абсорбционной способности за счет более толстого поверхностного слоя. В кислотном растворе NH 3 немедленно превращался в NH 4 + .После разбавления деминерализованной водой NH 4 + был обнаружен рефлектометрией (тест-полоски RQflex ® plus 10 и Reflectoquant ® , Merck KGaA, Дармштадт, Германия). В расчетном подходе учитывались параметры температуры воздуха, концентрации NH 4 + и pH торфяного субстрата, которые определялись параллельно с измерениями NH 3 . Концентрация теоретически образующегося NH 3 в растворе питательной среды оценивалась согласно Hobiger (1996).Результаты, полученные обоими сравнительными методами, были линейно коррелированы с концентрациями NH 3 , определенными с помощью метода открытой камеры, как указано коэффициентами определения ( R ² , P <0,001) 0,75 (кислотные ловушки) и 0,67 (метод расчета).

Концентрация NH 3 в пробах воздуха контрольных обработок (NO 3 удобрения) всегда была ниже предела обнаружения, даже когда концентрация NH 3 на соседних участках достигала максимального уровня 1.8 частей на миллион. Напротив, в кислотных ловушках, размещенных на горшках с базиликом NO 3 (контроль), было измерено заметное накопление NH 4 + , которое достигло одной трети уровня на участках с органическими удобрениями. Таким образом, мы предполагаем, что метод камеры с открытым верхом, использованный в наших экспериментах, был подходящим для предотвращения эффектов перекрытия за счет процессов диффузии и дрейфа NH 3 в рамках организованной многослойной установки.

Статистический анализ

Параметры роста растений анализировали с помощью ANOVA и апостериорного теста Тьюки ( P <0.05). Предварительно предположения о нормальности и однородности дисперсий были проверены согласно тесту Колмогорова-Смирнова и критерию Fmax (Köhler et al., 2012), соответственно. При необходимости данные были логарифмически преобразованы для соответствия нормальному распределению и однородности дисперсии. В экспериментах 1 и 2 обработки органическими веществами анализировали с помощью двухфакторного дисперсионного анализа (исходное значение pH субстрата x скорость заправки основания N). Для сравнения органических обработок с контролем NO 3 с подкормкой использовалась односторонняя модель.Аналогичным образом эксперимент 3 был проанализирован с помощью однофакторного дисперсионного анализа. Взаимосвязь между свойствами субстрата и характеристиками роста растений исследовали с помощью линейного регрессионного анализа. Тот же подход был использован для оценки воздействия концентрации NH 3 в воздухе на базилик. Все анализы были выполнены с использованием статистического программного обеспечения SPSS, версия 25 (IBM Deutschland GmbH, Ehningen, Германия).

Результаты

Разработка параметров субстрата и воздушный NH

3 Концентрация

Субстрат NH

4 + Концентрация

С самого начала выращивания базилика, NH 4 + концентрация повысилась при всех обработках удобрениями с аминокислотным удобрением (AAF).В эксперименте 2 через 7 дней после посева было обнаружено приблизительно 56% поданного органического азота в форме NH 4 + , когда рН субстрата изначально был доведен до 5,5. Напротив, при pH 6,5 только 34–43% поставляемого органического азота имеет вид NH 4 + (рис. 3A). В эксперименте 3 уже в день посева высокая концентрация NH 4 + была доступна в среде для выращивания (рис. 4A). Без поправки на компост концентрация NH 4 + оставалась на том же уровне в течение примерно 4 недель, а затем непрерывно снижалась до конца эксперимента.В торфяно-компостных смесях процесс нитрификации был ускорен, и, таким образом, концентрация NH 4 + -N снизилась ниже 100 мг (л субстрата) -1 уже через 3–4 недели после посева. В эксперименте 3 подкормки немного увеличили концентрацию субстрата NH 4 + за последние 2 недели культивирования.

Рисунок 3 Разработка субстрата NH 4 + -N (A) , NO 3 -N (D) и NO 2 (E ) , а также pH субстрата (B) и NH 3 концентрация в воздушной среде растений базилика (C) с течением времени в эксперименте 2.Общая концентрация водорастворимой соли субстрата в эксперименте 1 показана в (F) . Планки погрешностей указывают стандартное отклонение ( n = 3). 1) AAF, аминокислотное удобрение (основной компонент поставки органического азота).

Рисунок 4 Разработка субстрата NH 4 + -N (A) , NO 3 -N (D) , NO 2 (E) и P (F) , а также pH субстрата (B) и концентрация NH 3 в воздушной среде растений базилика (C) с течением времени в эксперименте 3.Планки погрешностей указывают стандартное отклонение ( n = 3). 1) N основная подкормка / 2) N подкормка [мг N (L субстрата) -1 ]; 3) AAF, аминокислотное удобрение (основной компонент поставки органического азота).

pH субстрата

В первую неделю после посева pH субстрата увеличивался на 0,5–1,0 единицы при внесении органических удобрений без добавления компоста (Рисунки 3B, 4B). После этого pH субстрата оставался на слабощелочном уровне в течение примерно 4 недель при первоначальном значении pH 6.5. Впоследствии pH субстрата неуклонно снижался. В эксперименте 3, который характеризовался самым продолжительным экспериментальным периодом (8 недель культивирования), pH достигал 6,3. В горшках с добавлением компоста pH субстрата упал ниже 7,0 уже через 1 или 2 недели после посева при использовании обработки перед хранением продолжительностью 12 или 1 день соответственно. После подкормки AAF pH субстрата немного увеличился с 6,0 до максимального значения 6,5 за последние 2 недели культивирования.

NH

3 Воздействие базилика в воздушной среде

При высоких концентрациях NH 4 + и слабощелочных условиях в субстрате концентрация NH 3 в воздушном пространстве базилика под пологом первоначально находилась в диапазоне от 0.4 и 1,8 ppm (Рисунки 3C, 4C). В последующие недели концентрация NH 3 непрерывно снижалась, даже когда NH 4 + все еще оставался преобладающим источником азота в среде для выращивания, а pH субстрата был выше 7,0 (обработки 4, 5 и 7). В первых двух экспериментах NH 3 оставался ниже предела обнаружения (<0,125 частей на миллион) на протяжении всего периода выращивания, когда базовая доза внесения была ограничена до 250 мг AAF-N (L субстрат) -1 , а pH субстрата был равным. изначально настроено на 5.5. Аналогичным образом, при прямой поставке NO 3 (обработки 1 и 6) NH 3 обнаружено не было. Добавление 5% (об. / Об.) Зрелого компоста к органически удобренному торфу ускоряет снижение концентрации NH 3 , особенно когда смешанную среду для выращивания предварительно хранили в течение 12 дней (обработка 8). В этом случае NH 3 почти полностью исчез через 2 недели после посева. Однако, когда модифицированный компостом торф хранился всего 1 день (обработка 9), это истощение NH 3 было отложено на 1 неделю.Повторные подкормки AAF-N (обработки 8 и 9), применяемые в течение последних 11 дней культивирования, не стимулировали улетучивание NH 3 из субстрата. Концентрация NH 3 в воздухе в этот период всегда была ниже предела обнаружения.

Субстрат NO

3 Концентрация и NH 4 + -N / NO 3 -N Отношение

Наличие NO 3 в органически удобренном торфе также зависит от исходного pH субстрата.При pH 5,5 концентрация NO 3 оставалась ниже 10 мг N (L субстрата) -1 в течение всего испытательного периода (рис. 3D). Напротив, при начальном pH 6,5 концентрация NO 3 поднялась выше 50 мг N (L субстрата) -1 . Тем не менее, даже здесь прошло 4–5 недель, прежде чем этот уровень был достигнут. Таким образом, на стадии всходов (7–21 день после посева) базилик подвергался воздействию высокого отношения NH 4 + -N / NO 3 -N.Намного более быстрое накопление NO 3 наблюдалось, когда торф смешивали со зрелым компостом и затем хранили в течение 12 дней перед использованием (Рисунок 4D; Таблица 4). В этом субстрате соотношение NH 4 + -N / NO 3 -N было почти сбалансированным на стадии проростков базилика примерно через 10 дней после посева. Еще через неделю преобладающим источником азота в субстрате был NO 3 . Если срок хранения торфяно-компостной смеси был ограничен 1 днем, накопление NO 3 отставало на 2 недели и было менее выраженным.В конце периода культивирования концентрация NO 3 в обработках с использованием органических удобрений составляла от 50 до 100 мг N (л субстрата) -1 . Значительно более высокий уровень NO 3 был обнаружен в субстрате базилика NO 3 .

Субстрат NO

2 Концентрация

Помимо NH 4 + и NH 3 , NO 2 также является потенциально фитотоксичным видом N.Его концентрация в органически удобренном субстрате составляла от 0 до 42 мг (л субстрата) -1 и достигала максимума через 2–4 недели после посева (Рисунки 3E, 4E) с началом усиленной нитрификации (Рисунки 3D, 4D). В торфе с добавлением компоста накопление NO 2 подавлялось при хранении приготовленной питательной среды в течение 12 дней. Аналогичным образом, концентрация NO 2 всегда оставалась ниже 2,5 мг (л субстрата) -1 (предел количественного определения) при контрольной обработке с подачей NO 3 .

Общая концентрация водорастворимой соли и экстрагируемого CAT P в субстрате

Общая концентрация водорастворимой соли в субстрате (выраженная как KCl), измеренная в эксперименте 1, находилась в диапазоне от 0,6 до 1,3 г (л субстрата) — 1 (рис. 3F). В эксперименте 3 концентрация экстрагируемого CAT P составляла ≤ 25 мг (л субстрата) -1 в течение первых 4 недель культивирования. После подкормки дигидрофосфатом кальция извлекаемая с помощью CAT концентрация P повысилась и оставалась выше 30 мг P (L субстрат) -1 до конца периода культивирования (фиг. 4F).

Влияние NH

3 и NH 4 + Воздействие на рост базилика

Прорастание базилика

В течение первой недели после посева из семян появились корешки и ростки. Во всех вариантах обработки наблюдалось однородное начало прорастания. Однако впоследствии рост проростков замедлился при обработках, подвергшихся воздействию высоких концентраций NH 3 и NH 4 + (Рисунок 5). Удлинение корешка было подавлено, и поэтому он не врастал в субстрат.Точно так же нарушалось развитие гипокотиля и семядолей. Кроме того, первичные листья стали частично хлоротичными (рис. 6Е). Однако семядоли оставались зелеными и не имели симптомов некроза. Через три недели после посева большая часть низкорослых саженцев погибла. С четвертой недели выращивания количество растений оставалось постоянным. Таким образом, результаты, представленные в таблицах 2–6, учитывают среднюю концентрацию NH 3 и NH 4 + на ювенильной стадии базилика (7–21 день после посева).5 (В) .

Рисунок 6 Растения базилика через 35 дней после посева в эксперименте 2. Контроль, полученный нитратами (A) ; базовая повязка 250 мг AFF-N (L субстрат) -1 (B, D) и 750 мг AFF-N (L субстрат) -1 (C, E) ; исходный pH субстрата 5.5 (B, C) и 6,5 (D, E) . 1) AAF, аминокислотное удобрение (основной компонент поставки органического азота).

Таблица 2 Количество растений, урожай свежего вещества и высота растений через 28 и 35 дней после посева под воздействием аммиачных форм азота, определенные через 7–21 день после посева в опытах 1 и 2, соответственно ( n = 3).

Таблица 3 Дисперсионный анализ результатов влияния исходного pH субстрата и подкормки азотным основанием на количество растений, урожай свежего вещества и высоту растений в опытах 1 и 2 (28 и 35 дней после посева, соответственно).

Таблица 4 NH 3 , NH 4 + -N и NO 3 -N концентрация, а также NH 4 + -N / NO 3 — Соотношение -N определено через 7–21 день после посева в опыте 3 ( n = 3).

Таблица 5 Количество растений, урожай свежего вещества и высота растений через 35 и 56 дней после посева в опыте 3 ( n = 3).

Таблица 6 Максимальное воздействие аммиачного азота, определенное в среднем через 7–21 день после посева для получения ≥ 90% урожайности растений, по сравнению с контролем NO 3 (через 28 и 35 дней после посева в эксперименты 1 и 2 соответственно) ( n = 30).

По сравнению с контролем с подкормкой NO 3 , количество растений было уменьшено до 70% при обработке базовой подкормкой 750 мг AFF-N (L субстрат) -1 на начальном этапе. рН субстрата 6,5 (Таблицы 2, 5). Всхожесть здоровых растений улучшилось, когда pH субстрата изначально был доведен до 5,5 и, в гораздо большей степени, за счет снижения базовой нормы внесения до 250 мг AFF-N (L субстрат) -1 . В этом случае на скорость всходов растений не повлияло отрицательное влияние даже при более высоком уровне pH.Точно так же добавление зрелого компоста к торфу существенно увеличивало долю здоровых растений, если измененный субстрат подвергался предыдущему хранению в течение 12 дней. Количество растений положительно коррелировало с концентрацией NO 3 и отрицательно коррелировало с соотношением NH 4 + -N / NO 3 -N, определенным в среде выращивания во время молоди. стадия роста растений (таблица 5). Когда концентрация аммиачного N превышала 100 мг NH 4 + -N (L субстрат) -1 и 0.2 ppm NH 3 в среде надземных растений количество растений сократилось более чем на 10% по сравнению с контролем с подкормкой NO 3 (таблица 6). Однако неблагоприятное влияние NH 4 + на прорастание семян было менее выраженным, пока концентрация NH 3 оставалась ≤ 0,2 ppm.

Производство биомассы побегов и высота растений

Нарушение роста на ювенильной стадии оказало длительное негативное влияние на развитие сельскохозяйственных культур.Выход свежего вещества побегов сильно снизился в конце экспериментов, когда базилик, выращенный на чистом торфе, удобряли 750 мг AAF-N (L субстрат) -1 и / или pH субстрата доводили до 6.5 перед использованием (таблицы 2 и 5 и рисунки 6C – E). ANOVA показал, что урожайность не была существенно связана с количеством растений ( P ≥ 0,25). Таким образом, производство биомассы органически удобренного базилика подверглось неблагоприятному воздействию даже помимо воздействия сокращения количества растений.Удлинение побегов также подавлялось, на что указывало уменьшение высоты растений. Кроме того, листовые пластинки оставались меньше (Рисунки 6D, E).

Высота растений и выход свежего вещества органически удобренного базилика отрицательно коррелировали с воздействием NH 3 и NH 4 + в ранний период культивирования. Кроме того, рост растений замедлялся за счет увеличения pH субстрата (таблицы 3 и 5). И наоборот, увеличение соотношения NO 3 и снижение NH 4 + -N / NO 3 -N способствовало повышению урожайности сельскохозяйственных культур (Таблица 5).Без заметного образования NO 3 в первые 3 недели культивирования максимальный рост органически удобренного базилика наблюдался при базовой подкормке 250 мг AAF-N (L-субстрат) -1 в сочетании с исходным субстратом. pH 5,5 (рис. 6В). При этой обработке NH 4 + оставался относительно постоянным на уровне около 150 мг N (L субстрата) -1 (фиг. 3A). При таком поступлении азота выход свежего вещества и высота растений снизились на 8–34% по сравнению с контролем с подкормкой NO 3 в первых двух экспериментах (Таблица 2).При всех других вариантах внесения органических азотных удобрений урожай свежего вещества и высота растений были снижены на 44–94% и 31–66% соответственно.

В эксперименте 3 максимальный рост растений наблюдался при выращивании базилика на торфе с добавкой компоста, который ранее хранился в течение 12 дней (Таблица 5). При такой обработке базилик достиг высоты 15 см, что необходимо для реализации продукта через 7 недель после посева. Однако, когда приготовленный компостно-торфяной субстрат хранился всего 1 день, товарный размер урожая был получен с задержкой в ​​1 неделю (данные не показаны).Без добавления компоста высота растений достигала 7,5 см после восьми недель культивирования по сравнению с 9,7 см для контроля. Относительно слабые показатели роста растений, закармливаемых NO 3 в этом эксперименте, были связаны с временной нехваткой фосфора в течение первой половины культивирования. Симптомы дефицита фосфора стали заметны при контрольной обработке примерно через 4 недели после посева, когда семядоли стали пурпурными, а удлинение побегов отставало. Хотя вскоре после этого было проведено орошение субстрата водорастворимым P-удобрением, рост растений оставался заметно ниже, чем обычно наблюдалось при подаче азота под номером NO 3 (e.g., в эксперименте 2, рис. 6А).

Обсуждение

Динамика N в субстрате после внесения органических азотных удобрений

Базилик достигает своего товарного размера при выращивании в тепличных горшках через 4–10 недель после посева (Eghbal, 2017). Чтобы обеспечить достаточное поступление азота в органическое производство, урожай следует удобрять легко разлагаемыми источниками органического азота. Минерализация AAF, исследованная в этом исследовании, началась сразу после его включения в среду для выращивания, на что указывает быстро увеличивающаяся концентрация NH 4 + (Рисунки 3A, 4A) и повышение pH субстрата (Рисунки 3B, 4B). в первую неделю выращивания.Однако нитрификация откладывалась на 3–4 недели при обработке торфом в качестве единственного компонента субстрата. Сопоставимые наблюдения были сделаны после внесения различных органических удобрений, таких как роговая стружка, кровяная мука и мочевина, на торф или древесные субстраты (Niemiera et al., 2014; Frerichs et al., 2017; Bergstrand et al., 2018). После добавления аминокислоты аргинина в образцы почвы Kemmitt et al. (2006) обнаружили наивысшую концентрацию NH 4 + через 2–8 дней. Истощение запасов аминокислот ускорялось известкованием природных кислых почв.Корреляцию между скоростью минерализации азота и pH почвы можно описать квадратным уравнением, которое указывает максимальное накопление NH 4 + при pH 5,5. Точно так же в наших экспериментах мы всегда наблюдали значительно более высокую концентрацию NH 4 + в торфяных субстратах, первоначально отрегулированную до pH 5,5, а не до pH 6,5 (рис. 3A). В отличие от этих результатов хорошо известно, что большинство почвенных микроорганизмов предпочитают pH почвы около 7,0 (Coyne, 1999).Таким образом, в нескольких лабораторных экспериментах по инкубации почвы было обнаружено увеличение скорости минерализации азота до этого уровня pH (Fu et al., 1987; Curtin et al., 1998). Скорее всего, меньшее накопление NH 4 + в органически удобренном торфе при pH 6,5 было связано с более высокими выбросами NH 3 по сравнению с pH 5,5 (Рисунок 3C). Судя по концентрациям NH 3 в воздухе, обнаруженным над поверхностью субстрата, потери газообразного азота были наиболее интенсивными в течение первой недели культивирования.Соответственно, в полевых экспериментах с внесением мочевины улетучивание NH 3 было на порядок выше в первые дни после внесения удобрений по сравнению с последующим периодом. В целом более 60% нанесенной мочевины может быть потеряно через NH 3 (Black et al., 1985; Pacholski et al., 2006).

Подход с открытой камерой, использованный в этом исследовании, не подходит для количественной оценки абсолютного улетучивания NH 3 . Тем не менее, значительные потери NH 3 из питательной среды можно предположить, принимая во внимание количества NH 4 + , обнаруженные в течение первых 2 недель культивирования.На этом этапе выращивания потребление минеральных питательных веществ растениями все еще незначительно. В среднем не более 60% и 40% нанесенного AFF-N было обнаружено как NH 4 + -N в торфе при начальных значениях pH субстрата 5,5 и 6,5 соответственно. Поскольку аминокислоты разлагаются почвенными микроорганизмами с периодом полураспада 1–12 часов (Jones, 1999), большую часть выброса NH 4 + следует ожидать в течение нескольких дней. Однако определенная часть аминокислот остается в микробной биомассе (Barak et al., 1990). Помимо иммобилизации азота, в первую очередь, выбросы NH 3 , вероятно, способствовали нарушению баланса применяемого AFF-N, особенно при более высоком pH субстрата. Потери газообразного азота при денитрификации обычно относительно низки в субстратах на основе торфа, если не допускать переувлажнения или уплотнения (Agner and Schenk, 2005), что подтверждается проведенными здесь испытаниями.

Увеличение pH субстрата сразу после внесения органической основы отражает потребление H + путем аммонификации (Ferguson et al., 1984). Однако эти временные сдвиги pH были менее выражены при более высоком исходном pH субстрата (рис. 3B). Во-первых, это может быть связано с логарифмической шкалой pH. Чем выше pH, тем больше гидроксид-ионов (OH ) требуется для увеличения pH на одну единицу. С другой стороны, с повышением pH NH 3 все больше теряется из субстрата. Каждый моль выбрасываемого NH 3 увеличит концентрацию H + на один моль (Sommer et al., 2004).

Концентрация аммиака в воздушной среде проростков базилика достигла максимального уровня 1.8 частей на миллион через семь дней после посева (Рисунки 3C и 4C). В следующие недели воздействие NH 3 уменьшалось быстрее, чем ожидалось, по сравнению с относительно медленным снижением концентрации NH 4 + и pH в субстрате (рисунки 3A, B и 4A, B). Заметные изменения климатических условий (например, температуры воздуха, скорости ветра) можно исключить как возможные причины. В полевых экспериментах было показано, что самые верхние миллиметры почвы являются наиболее важными для улетучивания NH 3 (Pacholski et al., 2006). Поэтому мы предполагаем, что концентрация NH 4 + и pH в верхней зоне субстрата падали быстрее по сравнению с условиями во всем субстрате.

В чистом торфе нитрификация ускорялась и увеличивалась при pH субстрата, близком к нейтральному, по сравнению с более кислыми условиями (Рисунки 3B, D и 4B, D). Сходные результаты были получены Лангом и Эллиоттом (1991), которые определили слегка щелочной pH как оптимальный для нитрификации в средах для выращивания на основе торфа.При pH ≤ 5,4 нитрификация сильно подавлялась. С другой стороны, щелочные условия могут привести к накоплению NO 2 из-за ингибирующего действия высоких концентраций NH 3 на Nitrobacter sp., Которые превращают NO 2 в NO. 3 (Бант, 1988; Ветановец, Петерсон, 1990). Соответственно, мы наблюдали заметное накопление NO 2 при обработках с pH субстрата ≥ 7.0 в начале нитрификации (Рисунки 3E, 4E). Однако, если в торф был добавлен 5% (об. / Об.) Компост зрелых зеленых отходов и затем он хранился в течение 12 дней перед использованием, NO 2 накопление было подавлено (обработка 8). В этой смеси субстратов pH всегда составлял от 6,0 до 7,0 и, следовательно, находился в диапазоне, предотвращающем как ингибирование нитрификации, так и накопление NO 2 из-за низкого и высокого уровней pH, соответственно. Уже через 2 недели после посева две трети минерального азота в торфяно-компостной смеси были преобразованы в NO 3 .Напротив, в торфяном субстрате без добавки компоста аналогичная пропорция NO 3 была достигнута примерно через 5 недель (рисунки 4A, D). Зрелые компосты обычно содержат большое количество нитрифицирующих бактерий (Chroni et al., 2009; Zeng et al., 2012) и, таким образом, могут служить инокулятом для обогащения торфа этими микроорганизмами (Delics et al., 2017). Тем не менее, очевидно, прошло несколько дней, прежде чем сообщество нитрификаторов полностью утвердилось в их новой среде.Об этом свидетельствуют результаты, полученные с смесью торфа и компоста, которую хранили всего за 1 день перед использованием (обработка 9). В результате накопление NO 3 отставало примерно на 2 недели по сравнению с той же субстратной смесью, которая ранее хранилась в течение 12 дней.

При продолжающейся нитрификации pH субстрата немного снизился (Рисунки 3B, 4B). Этот образец отражает образование ионов 2 H + во время микробного окисления NH 4 + до NO 2 (Сахрават, 2008).В чистом торфе снижение pH продолжалось до конца опыта. На более позднем этапе культивирования растения также могут способствовать слабому подкислению питательной среды, поскольку поглощение корнями NH 4 + сопровождается эквивалентным оттоком H + (Schubert and Yan, 1997). В торфо-компостных смесях pH субстрата снова изменился за последние 2–3 недели. Скорее всего, небольшое повышение pH в этой фазе было вызвано повторными подкормками AAF, а также поглощением растениями NO 3 , потребляющего H + .

Воздействие NH

3 , NH 4 + и NO 2 Воздействие на рост базилика

В экспериментах базилик подвергался воздействию различных концентраций NH 3 и NH 4 + с самого начала выращивания. Это было сделано путем варьирования скоростей повязки на основе AAF в сочетании с различными начальными значениями pH субстрата. На прорастание корешка и зародышевой почки из семян не повлияла ни одна из исследованных обработок.Очевидно, присутствие аммонического азота не влияло на физиологические процессы, связанные с началом прорастания базилика. Однако вскоре после этого всходы пострадали от повышенного воздействия NH 3 и NH 4 + . В этих условиях сильно подавлялось развитие корешка, гипокотиля и семядолей (рис. 5В). Аналогичные неблагоприятные эффекты аммиачных форм азота на прорастание и развитие проростков были зарегистрированы для нескольких видов растений (Bremner and Krogmeier, 1989; Ells et al., 1991; Бритто и Кронзакер, 2002; Qi et al., 2012; Bergstrand et al., 2018).

Количество выживших проростков и их последующие показатели роста отрицательно коррелировали с интенсивностью воздействия NH 3 и NH 4 + , происходящего через 7–21 день после посева (таблицы 2, 4 , и 5) . В целом, эти отношения были более сильными для NH 3 и более выраженными в период с ноября по апрель (эксперименты 2 и 3), чем в сентябре / октябре (эксперимент 1).Таким образом, похоже, что условия выращивания, преобладающие в зимние месяцы, увеличивают аммонийную восприимчивость базилика. С другой стороны, также возможно, что NH 3 , выделяемый из субстрата, дольше оставался в растительном покрове из-за ограниченной вентиляции теплиц в более холодное время года. Соответственно, из промышленного производства органического базилика известно, что нарушения роста более серьезны в период зимнего выращивания. Помимо задержки роста растений, типичными симптомами являются хлоротичные и некротические семядоли, часто сопровождающиеся грибковыми заболеваниями, такими как Botrytis (Frerichs et al., 2017). Удивительно, но в этом исследовании семядоли всегда оставались зелеными. Это противоречило предыдущим выводам даже для одного и того же сорта базилика в аналогичных условиях выращивания (Frerichs et al., 2017). Таким образом, сильное воздействие аммиачного азота не обязательно приводит к обесцвечиванию семядолей.

Критические уровни воздействия аммиачного азота на ранней стадии развития базилика (7–21 день после посева) были достигнуты при концентрациях 0,1–0,2 ppm NH 3 в воздушной среде растений и 50–100 мг NH 4 + -NL -1 в среде выращивания.При более высоких уровнях концентрации количество растений, выход свежего вещества и высота растений уменьшились более чем на 10% (Таблица 6). Что касается NH 3 , то базилик более чувствителен, чем многие другие продовольственные культуры, согласно обзору Krupa (2003). Однако большинство опубликованных данных, относящихся к этому аспекту, было основано на экспериментах по экспозиции растений на послевсходовой стадии. Исследование пшеницы показало, что прорастание семян этого вида зерновых не изменяется при концентрации NH 3 ниже 0.3 ppm, но полностью ингибируется при 0,8 ppm (Pairintra, 1973). Для базилика, выращенного в горшках, наблюдались плохая всхожесть и слабый рост растений, когда концентрация NH 4 + -N составляла 100–130 мг (л субстрата) -1 в первые 3 недели после посева (Bergstrand et al. др., 2018). Напротив, Frerichs et al. (2017) сообщили, что на процесс прорастания базилика не повлияли отрицательно уровни NH 4 + -N при примерно 200 мг (л субстрата) -1 .В этом эксперименте pH субстрата был слегка кислым на протяжении всего периода прорастания, и, таким образом, NH 3 можно считать незначительным. В этих условиях базилик, по-видимому, переносил до 300 мг NH 4 + -N (L субстрат) -1 (Таблица 6). Однако после того, как прорастание завершено и проростки начинают поглощать питательные вещества из питательной среды, должны присутствовать гораздо более низкие концентрации NH 4 + -N для обеспечения правильного роста растений.

Высокие концентрации NH 4 + и NH 3 на ранней стадии развития растений оказали длительное неблагоприятное воздействие на рост базилика. Это стало очевидным благодаря тому факту, что растения в варианте 9 генерировали на 41% меньше биомассы побегов, чем растения в варианте 8 (таблица 5), хотя оба растения выращивались при умеренном или низком воздействии аммония во второй половине периода культивирования. Однако проростки в варианте 9 подвергались воздействию значительно более высоких уровней концентрации аммиачного азота, особенно NH 3 (рис. 4).

В обработках с органическими удобрениями концентрации NO 2 достигли максимального уровня 42 мг (л субстрата) -1 (Рисунки 3E, 4E). Вредные эффекты для растений можно ожидать, если концентрация NO 2 превышает 5 мг л -1 в корневой зоне (Zsoldos et al., 1993; Hoque et al., 2007), особенно на стадии проростков ( Бергманн, 1993). Однако NO 2 появился лишь временно в нескольких горшках.Таким образом, концентрация NO 2 была в основном все еще очень низкой на второй неделе культивирования, когда стали заметны нарушения роста проростков. Следовательно, маловероятно, что NO 2 значительно способствовал этим побочным эффектам. Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования для изучения накопления NO 2 в питательных средах после органических удобрений и для выяснения чувствительности базилика к этому неорганическому виду азота.

Влияние pH и других параметров субстрата на рост базилика

Высота растений и выход свежего вещества базилика были обратно пропорциональны pH субстрата в экспериментах 2 и 3 (таблицы 2, 4 , и 5). Помимо увеличения воздействия NH 3 , другие факторы могли ограничить развитие сельскохозяйственных культур в нейтральных или слабощелочных условиях. Это было особенно заметно в эксперименте 3. Растения, питавшиеся преимущественно NO 3 (обработка 6), не подвергались воздействию поддающихся обнаружению количеств NH 3 , но демонстрировали задержку роста.Вероятно, это произошло в основном из-за низкой доступности фосфора в среде выращивания (рис. 4F). Согласно Meinken (2008), концентрация ≥ 22 мг P (L субстрат) -1 , извлеченная CAT, требуется для обеспечения садовых культур, имеющих высокую потребность в питательных веществах, в достаточной степени с P. Этот уровень не был достигнут в чистых торфяных субстратах в пределах первые 4 недели выращивания. В результате появились типичные симптомы дефицита фосфора, такие как обесцвечивание семядолей в фиолетовый цвет. Впоследствии подача фосфора в субстрат была увеличена до целевого диапазона с помощью подкормки водорастворимым фосфатным удобрением.Одновременно доступность фосфора предположительно улучшилась за счет снижения pH субстрата (рис. 4В), что могло повысить растворимость апатитовых соединений (Alt et al., 1994).

Несмотря на достаточное поступление фосфора во второй половине культивирования, рост растений в контрольной обработке эксперимента 3 оставался заметно ниже, чем обычно наблюдается для удобренного базилика NO 3 . В обоих предыдущих экспериментах растения NO 3 давали самый высокий выход свежего вещества (Таблица 2).С одной стороны, лучшая урожайность может быть связана с более низким pH субстрата в этих испытаниях (рис. 3B). С другой стороны, характеристики различных типов апатитовых P-удобрений могли сыграть свою роль. В эксперименте 3 использовали удобрение на основе костной муки. В принципе, этот продукт демонстрирует более высокую растворимость P при повышенном pH, чем каменный фосфат (Möller, 2015), который применялся в экспериментах 1 и 2. Однако удобрение из костной муки состояло из более крупных частиц (80% <2.0 мм), чем минеральный фосфат через ультратонкое сито (80% <0,1 мм). Поскольку процент растворения апатитового фосфора сильно увеличивается с уменьшением размера частиц (Kanabo and Gilkes, 1988), предполагается, что удобрение из костной муки было менее эффективным в снабжении фитодоступным P.

Базилик, выращиваемый на торфе с добавлением компоста, не проявлял себя любые симптомы дефицита фосфора, хотя исходное количество фосфора было одинаково скорректировано во всех случаях лечения. Тем не менее, в субстратах из чистого торфа более низкие концентрации экстрагируемого CAT фосфора наблюдались в начале периода культивирования.Наиболее вероятно, что положительный эффект компоста на доступность фосфора был результатом более быстрого снижения pH в этой смеси субстратов (рис. 4B, F).

Поглощение железа базиликом также затруднялось при повышенном pH субстрата, на что указывало желтоватое изменение цвета первичных листьев. Эти симптомы дефицита были в основном видны во втором эксперименте с чистым торфом (рис. 6E). В нейтральных или слабощелочных условиях ионы Fe быстро реагируют с кислородом и ионами OH с образованием труднорастворимых соединений (Lindsay and Schwab, 1982).Эти процессы осаждения могут происходить, даже если удобренное Fe хелатируется этилендиаминтетрауксусной кислотой (EDTA) или гидратом тринатриевой соли N- (2-гидроксиэтил) этилендиаминтриуксусной кислоты (HEDTA). Для быстрого облегчения возникающих симптомов дефицита железа эффективным средством являются опрыскивание листвы хелатами Fe (Fisher et al., 2003), применяемое путем верхнего орошения в эксперименте 3.

Стабилизация pH субстрата против подщелачивания, а также подкисления. сдвигов можно добиться, используя заменители торфа с высокой буферной способностью, такие как компостированная кора (Neumaier and Meinken, 2015).

Подходы к уменьшению вредного воздействия NH

3 и NH 4 + Эффекты

Для улучшения роста органически удобряемого базилика необходимы стратегии, которые способствуют уменьшению интенсивности и укорочению NH 3 и NH 4 + экспозиция растений. В этом отношении, прежде всего, кажется разумным обеспечить умеренные скорости обработки органического азотного основания [≤ 250 мг N (L субстрат) -1 ] и довести pH субстрата до примерно 5.5. Когда базилик высевается в питательную среду на основе торфа с такими характеристиками, воздействие на проростки аммиачного азота будет оставаться ниже или близко к вышеупомянутым уровням критической концентрации (Рисунки 3A, C и Таблица 6). Чтобы удовлетворить потребности базилика в общем азоте, базовую подкормку можно дополнить повторными подкормками на более позднем этапе культивирования (Koller et al., 2014), не вызывая вредных концентраций аммиачного азота. Тем не менее, даже при использовании этих мер можно ожидать замедления роста растений по сравнению с азотно-минеральным базиликом (Таблица 2).Это, скорее всего, является результатом высокого соотношения NH 4 + -N / NO 3 -N в субстрате, остающемся в течение нескольких недель после нанесения органической основы. Предыдущее исследование показало, что производство биомассы выращиваемого в горшках базилика было самым высоким при сбалансированном питании с преобладанием азота NO 3 (Frerichs et al., 2019). В субстратах из чистого торфа обычно требуется более 4 недель, прежде чем концентрация NO 3 -N достигнет уровня, аналогичного уровню NH 4 + -N.Добавление в торф зрелого компоста из зеленых отходов оказалось подходящим методом для ускорения образования NO 3 в субстрате. Наилучшие результаты будут получены при хранении смеси компоста с торфом в течение нескольких дней перед использованием. Таким образом, органически удобренный базилик будет подкармливаться уже на стадии рассады и далее с достаточным количеством NO 3 .

В настоящих экспериментах 5% (об. / Об.) Добавки компоста к торфу было достаточно для реализации описанных положительных эффектов.При коммерческом выращивании органического базилика выбираются даже более высокие пропорции компоста, что также часто требуется ассоциациями органического земледелия. Это может усилить воздействие компоста. Однако Delics et al. (2017) обнаружили почти аналогичную картину нитрификации в несохраняемом субстрате на основе торфа, который содержал 30% (об. / Об.) Компоста из зеленых отходов, с тем, который мы наблюдали при использовании только одной шестой этой добавки с кратковременным хранением субстратная смесь в течение 1 дня. Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования, чтобы оценить соответствие соотношения компост / торф в смеси для предполагаемой цели.Кроме того, необходимо более подробно изучить влияние продолжительности и условий хранения (например, содержания воды в субстратной смеси, аэрации, температуры хранения) на динамику азота в компостно-торфяных смесях.

Для успешной реализации предложенных методов, безусловно, необходимо использовать полностью зрелый компост. Степень зрелости компоста можно легко определить, когда температура органического материала приближается к диапазону окружающей среды, а соотношение NH 4 + -N / NO 3 -N падает ниже 3 (Cáceres et al., 2018).

Выводы

Было обнаружено, что воздействие на сеянцы аммиачного азота является причиной нарушения роста, часто наблюдаемого при производстве органического базилика. Критические концентрации были достигнуты при 0,1-0,2 ppm NH 3 в воздушной среде и 50–100 мг NH 4 + -N (L субстрат) -1 в корневой зоне растений. Однако, когда NH 3 отсутствует и достаточное количество NO 3 доступно в среде выращивания, базилик, по-видимому, переносит более высокие уровни NH 4 + .Поэтому рекомендуется стратегия удобрения, которая сочетает умеренную подкормку на основе органического азота с повторными подкормками на более позднем этапе культивирования для удовлетворения общей потребности в азоте. Следует использовать легко разлагаемые органические удобрения, например, на основе аминокислот, чтобы обеспечить быструю минерализацию азота. Регулируя исходный pH субстрата до 5,5–6,0, можно предотвратить образование NH 3 во время аммонификации органических соединений. Кроме того, добавление зрелого компоста из зеленых отходов к субстратам на основе торфа может впоследствии способствовать нитрификации NH 4 + , особенно если эта смесь субстратов хранится в течение нескольких дней перед использованием.При таком подходе представляется возможным вводить в базилик значительную часть NO 3 прямо на стадии прорастания и, таким образом, улучшать показатели роста сельскохозяйственных культур. Однако необходимы дальнейшие исследования, чтобы оценить, может ли эта процедура быть также успешно использована в органическом производстве других выращиваемых в горшках культур.

Заявление о доступности данных

Наборы данных, созданные для этого исследования, доступны по запросу соответствующему автору.

Вклад авторов

CF, DD и AP разработали и разработали эксперименты и написали рукопись.CF провела эксперименты и проанализировала данные.

Конфликт интересов

AP использовалось EuroChem Agro GmbH во время расследования и изготовления рукописи.

Остальные авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Авторы выражают благодарность Klasmann-Deilmann GmbH, Geeste за предоставленные материалы субстрата, удобрения и пробирки Dräger ® для экспериментов по внесению удобрений.Авторы также хотели бы поблагодарить Ханса-Георга Шена, Оснабрюкский университет прикладных наук, за его поддержку в статистическом анализе данных.

Сокращения

AAF, Аминокислотные удобрения; BD — Базовая повязка; CAT, CaCl 2 / DTPA; ТД, Подкормка.

Источники

Агнер, Х., Шенк, М.К. (2005). Свойства торфа и денитрификация в культурах горшечных декоративных растений. Eur. J. Hortic. Sci. 703, 109–115.

Google Scholar

Альт, Д., Петерс И., Фоккен Х. (1994). Оценка наличия фосфора в компостах и ​​компостно-торфяных смесях различными методами экстракции. Commun. Почвоведение. Plat. Анальный. 25 (11–12), 2063–2080. DOI: 10.1080 / 00103629409369172.

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Барак, П., Молина, Дж. А. Э., Хадас, А., Клапп, К. Э. (1990). Минерализация аминокислот и свидетельство прямого усвоения органического азота. Почвоведение. Soc. Являюсь. J. 54 (3), 769–774.doi: 10.2136 / sssaj1990.03615995005400030024x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Bergmann, W. (1993). Ernährungsstörungen bei Kulturpflanzen. Entstehung, visuelle und analytische Diagnose . 3-е изд (Йена: Густав Фишер Верлаг).

Google Scholar

Бергстранд, К. Дж., Лёфквист, К., Асп, Х. (2018). Динамика доступности азота в горшечных культурах с органическими удобрениями. Biol. Agric. Hortic. 35, (3), 1–8. DOI: 10.1080 / 01448765.2018.1498389.

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Блэк, А.С., Шерлок, Р.Р., Смит, Н.П., Камерон, К.С., Го, К.М. (1985). Влияние формы азота, сезона и нормы внесения мочевины на улетучивание аммиака с пастбищ. Н. Рвение. J. Agric. Res. 28 (4), 469–474. doi: 10.1080 / 00288233.1985.10417992

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бремнер, Дж. М., Крогмайер, М. Дж. (1989). Доказательства того, что неблагоприятное воздействие мочевины на прорастание семян в почве связано с аммиаком, образующимся в результате гидролиза мочевины почвенной уреазой. Proc. Налл. Акад. Sci. 86 (21), 8185–8188. doi: 10.1073 / pnas.86.218185

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бритто, Д. Т., Кронцукер, Х. Дж. (2002). NH 4 + токсичность для высших растений. Критический обзор. J. Plant Physiol. 159 (6), 567–584. doi: 10.1078 / 0176-1617-0774

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Bunt, A.C. (1988). Среды и смеси для растений в контейнерах. (Руководство по приготовлению и использованию питательных сред для горшечных растений) .2-е изд (Лондон: Unwin Hyman Ltd.).

Google Scholar

Касерес, Р., Малинска, К., Марфа, О. (2018). Нитрификация в компостировании: обзор. Управление отходами. 72, 119–137. doi: 10.1016 / j.wasman.2017.10.049

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Chen, X., Wu, P., Zhao, X., Li, S. (2012). Влияние обогащения атмосферным аммиаком и азотного статуса на рост кукурузы. J. Soil Sci. Завод Нутр. 58 (1), 32–40. DOI: 10.1080 / 00380768.2011.654349

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Chroni, C., Kyriacou, A., Manios, T., Lasaridi, K. E. (2009). Исследование структуры и активности микробного сообщества как показателей стабильности компоста и эволюции процесса компостирования. Биоресурсы. Technol. 100 (15), 3745–3750. doi: 10.1016 / j.biortech.2008.12.016

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Койн, М. С. (1999). Микробиология почвы: исследовательский подход (Нью-Йорк: Делмар).

Google Scholar

Куртин Д., Кэмпбелл К. А., Джалил А. (1998). Влияние кислотности на минерализацию: зависимость минерализации органических веществ в слабокислых почвах от pH. Soil Bio. Biochem. 30 (1), 57–64. doi: 10.1016 / S0038-0717 (97) 00094-1

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Delics, B., Lohr, D., Meinken, E. (2017). Минерализация азота и последующая нитрификация рога в зависимости от размера частиц и внесения компоста в среду выращивания. DGG-Proceedings 7, 1–5. doi: 10.5288 / dgg-pr-em-2017

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Eghbal, R. (2017). Ökologischer Gemüsebau — Handbuch für Beratung und Praxis . 3-е издание (Майнц: Bioland Verlags GmbH).

Google Scholar

Ells, J. E., MeSay, A. E., Workman, S. M. (1991). Токсическое действие навоза, люцерны и аммиака на всходы и рост проростков огурцов. HortScience 26 (4), 380–383. DOI: 10.21273 / HORTSCI.26.4.380

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ferguson, R. B., Kissel, D. E., Koelliker, J. K., Basel, W. (1984). Улетучивание аммиака из-за поверхностного нанесения мочевины: эффект буферной способности водородных ионов. Почвоведение. Soc. Являюсь. J. 48 (3), 578–582. doi: 10.2136 / sssaj1984.03615995004800030022x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Фишер, П. Р., Вик, Р. М., Смит, Б. Р., Пазиан, К. К., Кметц-Гонсалес, М., Арго, В. Р. (2003). Коррекция дефицита железа у калибрахоа, выращенных в контейнерной среде при высоком pH. Hort. Технология 13 (2), 308–313. doi: 10.21273 / HORTTECH.13.20308

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Frerichs, C., Daum, D., Koch, R. (2017). Ammoniumtoxizität — eine Ursache für Wachstums- und Qualitätsbeeinträchtigungen von organisch gedüngtem Basilikum? J. Kulturpflanzen 69 (3), 101–112. doi: 10.1399 / JfK.2017.03.02

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Frerichs, C., Daum, D., Koch, R. (2019). Влияние формы и концентрации азота на урожай и качество выращиваемого в горшках базилика. Acta Hortic. 1242, 209–216. doi: 10.17660 / ActaHortic.2019.1242.29

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Fu, M. H., Xu, X. C., Tabatabai, M. A. (1987). Влияние pH на минерализацию азота в почвах, обработанных растительными остатками. Biol. Fertil. Почвы 5 (2), 115–119. doi: 10.1007 / BF00257645

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Gericke, D., Pacholski, A., Kage, H. (2011). Измерение выбросов аммиака в многопозиционных полевых экспериментах. Биосист. Англ. 108 (2), 164–173. doi: 10.1016 / j.biosystemseng.2010.11.009

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гибсон, Дж. Л., Питчай, Д. С., Уильямс-Родс, А. Л., Випкер, Б. Е., Нельсон, П. В., Доул, Дж. М. (2007). Дефицит питательных веществ в клумбах (Батавия, Иллинойс: Ball Publishing).

Google Scholar

Харц, Т. К., Джонстон, П. Р. (2006). Доступность азота из органических удобрений с высоким содержанием азота. Hort.Технология 16 (1), 39–42. doi: 10.21273 / horttech.16.10039

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Hobiger, G. (1996). Аммониак в Вассере. Ableitung einer Formel zur Berechnung von Ammoniak in wäßrigen Lösungen (Вена: Umweltbundesamt).

Google Scholar

Хоффманн, Г. (1997). VDLUFA-Methodenbuch, Band 1: Die Untersuchung von Böden . 4-е изд., 2-е Teillieferung (Дармштадт: VDLUFA-Verlag).

Google Scholar

Хок, М.М., Аджва, Х.А., Смит, Р. (2007). Токсичность нитритов и аммония для салата, выращенного в условиях гидропоники. Commun. Почвоведение. Завод анальный. 39 (1-2), 207–216. doi: 10.1080 / 00103620701759194

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Джонс, Д. Л. (1999). Биоразложение аминокислот и его потенциальное влияние на захват органического азота растениями. Soil Biol. Biochem. 31 (4), 613–622. doi: 10.1016 / S0038-0717 (98) 00167-9

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Канабо, И.А. К., Гилкс, Р. Дж. (1988). Влияние размера частиц фосфоритной породы Северной Каролины на ее растворение в почве и на уровни растворимого в бикарбонате фосфора. Fert. Res. 15 (2), 137–145. doi: 10.1007 / BF01050675

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кеммит, С. Дж., Райт, Д., Гулдинг, К. В. Т., Джонс, Д. Л. (2006). pH-регулирование динамики углерода и азота в двух сельскохозяйственных почвах. Soil Biol. Biochem. 38, 898–911. DOI: 10.1016 / j.soilbio.2005.08.006

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Киферле, К., Маггини, Р., Пардосси, А. (2013). Влияние азотного питания на рост и накопление розмариновой кислоты в базилике душистом ( Ocimum basilicum L. ), выращенном в гидропонной культуре. Aust. J. Crop Sci. 7, 321–327.

Google Scholar

Коллер, М., Альфольд, Т., Зигрист, М., Вербель, Ф. (2004). Сравнение удобрений на растительной и животной основе для производства органических овощей. Acta Hortic. 631, 209–215. doi: 10.17660 / ActaHortic.2004.631.27

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Коллер, М., Кох, Р., Деген, Б. (2014). Стратегии удобрения органических декоративных растений. Acta Hortic. 1041, 47–52. doi: 10.17660 / ActaHortic.2014.1041.3

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Köhler, W., Schachtel, G., Voleske, P. (2012). Biostatistik Eine Einführung für Biologen und Agrarwissenschaftler.5 изд. Берлин, Гейдельберг: Springer Spektrum).

Google Scholar

Лэгрейд, М., Бокман, О. К., Карстад, О. (1999). Сельское хозяйство, удобрения и окружающая среда (Уоллингфорд, Великобритания: издательство CABI).

Google Scholar

Лэнг, Х. Дж., Эллиотт, Г. К. (1991). Влияние соотношения аммоний: нитрат и концентрации азота на активность нитрификации в почвенных почвенных средах. J. Am. Soc Hortic. Sci. 116 (4), 642–645. DOI: 10.21273 / JASHS.116.4.642

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Линднер, У., Биллманн, Б. (2006). «Planung, Anlage und Auswertung von Versuchen im ökologischen Gemüsebau», в Handbuch für die Versuchsanstellung . Forschungsinstitut für biologischen Landbau FiBL.

Google Scholar

Линдси, В. Л., Шваб А. П. (1982). Химия железа в почвах и его доступность для растений. J. Plant Nutr. 5 (4-7), 821–840. doi: 10.1080 / 018209363012

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Meinken, E.(2008). «Charakterisierung von Böden und Substraten — Methoden und Bewertung der Ergebnisse», в Pflanzenernährung im Gartenbau . Ред. Робер Р., Шахт Х. (Штутгарт: Eugen Ulmer Verlag), 58–124.

Google Scholar

Наир, А., Нгуахио, М., Бирнбаум, Дж. (2011). Органическая добавка на основе люцерны в торфяно-компостную питательную среду для выращивания органической пересадки томатов. HortScience 46 (2), 253–259. doi: 10.21273 / HORTSCI.46.2.253

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Neumaier, D., Мейнкен, Э. (2015). Заменители торфа в средах выращивания — возможности и ограничения. Материалы Второго международного симпозиума по садоводству в Европе. Acta Hortic. 1099 (1), 159–166. doi: 10.17660 / ActaHortic.2015.1099.16

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ниемера, А. Х., Тейлор, Л. Л., Шрекхайз, Дж. Х. (2014). На гидролиз мочевины в субстрате сосны влияют уровни мочевины и извести. HortiScience 49 (11), 1437–1443. DOI: 10.21273 / HORTSCI.49.111437

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Pacholski, A., Cai, G., Nieder, R., Richter, J., Fan, X., Zhu, Z., et al. (2006). Калибровка простого метода определения испарения аммиака в полевых условиях — сравнительные измерения в провинции Хэнань, Китай. Nutr. Цикл. Агроэкосис. 74 (3), 259–273. doi: 10.1007 / s10705-006-9003-4

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Pacholski, A. (2016). Калиброванный пассивный отбор проб — многослойные полевые измерения выбросов NH 3 с использованием комбинации метода динамической трубки и пассивных пробоотборников. J. Vis. Exp. 109, e53273. doi: 10.3791 / 53273

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Pairintra, C. (1973). Влияние NH 3 из аммиачно-фосфатных удобрений на прорастание, рост проростков и урожай мелких растений пшеницы ( Triticium aestivum L.). Кандидатская диссертация. (Бозман, Монтана: Государственный университет Монтаны).

Google Scholar

Qi, X., Wu, W., Shah, F., Peng, S., Huang, J., Cui, K., et al. (2012). Улетучивание аммиака в результате внесения мочевины повлияло на прорастание и ранний рост всходов сухого риса прямого посева. Sci. Мир J. 857472, 1–7. doi: 10.1100 / 2012/857472

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сахрават, К. Л. (2008). Факторы, влияющие на нитрификацию почв. Commun. Почвоведение. План. 39 (9-10), 1436–1446. doi: 10.1080 / 00103620802004235

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шенк, М., Верманн, Дж. (1979). Влияние аммиака в питательном растворе на рост и метаболизм растений огурца. Почва растений 52, 403–414.doi: 10.1007 / BF02185583

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Schubert, S., Yan, F. (1997). Нитратное и аммонийное питание растений: влияние на кислотно-щелочной баланс и адаптацию плазмалеммы корневых клеток H + АТФаза. Z. Pflanzenernähr. Боденк. 160 (2), 275–281. doi: 10.1002 / jpln.19971600222

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шигаки, Ф., Делл, К. Дж. (2015). Сравнение недорогих методов измерения улетучивания аммиака. Агрон. J. 107 (4), 1392–1400. doi: 10.2134 / agronj140431

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Sommer, S. G., Schjoerring, J. K., Denmead, O. T. (2004). Выбросы аммиака от минеральных удобрений и удобрений сельскохозяйственных культур. Adv. Агрон. 82, 557–622.

Google Scholar

Штадлер, К., Фон Тухер, С., Шмидхальтер, У., Гуцер, Р., Хойвинкель, Х. (2006). Выбросы азота из органических удобрений растительного происхождения и промышленных удобрений, используемых в органическом садоводстве. J. Plant Nutr. Почвоведение. 169 (4), 549–556. doi: 10.1002 / jpln.200520579

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Van Beusichem, M. L., Kirkby, E. A., Baas, R. (1988). Влияние нитратов и аммония на поглощение, ассимиляцию и распределение питательных веществ у Ricinus communis. Plant Physiol. 86, 914–921. doi: 10.1104 / pp.86.3.914

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ветановец, Р. К., Петерсон, Дж.С. (1990). Судьба мочевины в среде сфагнового торфа в зависимости от источника и скорости извести. J. Am. Soc Hortic. Sci. 115 (3), 386–389. doi: 10.21273 / JASHS.115.3.386

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Wiesler, F. (1997). Агрономические и физиологические аспекты аммиачного и нитратного питания растений. Z. Pflanzenernähr. Боденк. 160, 227–238. doi: 10.1002 / jpln.19971600217

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Yang, J., Jiao, Y., Ян, В. З., Гу, П., Бай, С. Г., Лю, Л. Дж. (2018). Обзор методов определения улетучивания аммиака на сельскохозяйственных угодьях. IOP Conf. Сер. Earth Environ. Sci. 113, 012022. doi: 10.1088 / 1755-1315 / 113/1/012022

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Zeng, Y., De Guardia, A., Ziebal, C., De Macedo, F. J., Dabert, P. (2012). Нитрификация и микробиологическая эволюция при аэробной обработке твердых бытовых отходов. Биоресурсы. Technol. 110, 144–152.doi: 10.1016 / j.biortech.2012.01.135

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Zsoldos, F., Haunold, E., Vashegyi, A., Herger, P. (1993). Нитриты в корневой зоне и их влияние на поглощение ионов и рост проростков пшеницы. Physiol. Завод 89 (3), 626–631. doi: 10.1111 / j.1399-3054.1993.tb05225.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Влияние аммиака в питательном растворе на рост и метаболизм растений огурца

  • 1

    Arnon, D.J. 1949. Ферменты меди в изолированных хлоропластах. Полифенолоксидаза в Beta vulgaris . Plant Physiol. 24 , 1–15.

    Google ученый

  • 2

    Бенетт, А. К. и Адамс, Ф. 1970 Концентрация NH 3 (водн.), Необходимая для зарождения токсичности NH 3 для проростков. Почвоведение. Soc. Являюсь. Proc. 34 , 259–263.

    Google ученый

  • 3

    Кук, И.J. 1962 Токсическое действие мочевины на растения. Природа 194 , 1262–1263.

    Google ученый

  • 4

    Суд, М. Н., Стивен, Р. К. и Вайд, Дж. С. 1964 Токсичность как причина неэффективности мочевины в качестве удобрения II. Экспериментальный. J. Почвоведение. 15 , 49–66.

    Google ученый

  • 5

    Darwin, C. 1882, цит. По: Корень растения и его окружающая среда. Эд.Э. В. Карсон. Univ. Пресс Вирджиния, Шарлоттсвилль.

    Google ученый

  • 6

    Hackbarth, H. J. und Alt, D. 1963 Modifizierte Nitratbestimmung in Pflanzen nach der Methode Varner et al. Landwirtsch. Форш. 16 , 237–241.

    Google ученый

  • 7

    Хонерт, Т. Х. ван ден и Хойманс, Дж. Дж. М. 1961 Диффузия и поглощение ионов в тканях растений.Acta Bot. Neerl. 10 , 261–273.

    Google ученый

  • 8

    Хантер А. С. и Розенау В. А. 1966 Влияние мочевины, биурета и аммиака на прорастание и ранний рост кукурузы. Почвоведение. Soc. Являюсь. Proc. 30 , 77–81.

    Google ученый

  • 9

    Jungk, A. 1974 Характеристики поглощения фосфатов неповрежденными корневыми системами в питательном растворе в зависимости от вида растений, возраста и поступления фосфора.Proc. 7-го Интер. Coll. по анализу растений и проблемам удобрений, 185–196. Эд. J. Wehrmann, Inst. fuer Pflanzenernaehrung, TU Ганновер.

  • 10

    Киркби, Э. А. и Менгель, К. 1967 Ионный баланс в различных тканях растения томата по отношению к питанию нитратами, мочевиной или аммонием. Plant Physiol. 42 , 6–14.

    Google ученый

  • 11

    Крогманн Д. В., Ягендорф А. Т. и Аврон М. 1959 Разъединители фотосинтетического фосфорилирования хлоропластов шпината.Plant Physiol. 34 , 272–277.

    Google ученый

  • 12

    MacMillan, A. 1956 Поступление аммиака в клетки грибов. J. Exp. Бот. 7 , 113–126.

    Google ученый

  • 13

    Мэги, К. А., Пирсон, Р. У. и Хилтболд, А. Е. 1967 Токсичность разлагающихся растительных остатков для прорастания хлопчатника и роста проростков. Агрон. J. 59 , 197–199.

    Google ученый

  • 14

    Merkel, D. 1973 Der Einfluss des NO 3 ∶NH 4 —Verhaeltnisses in der Naehrloesung auf Ertrag und Gehalte an organischen und anorganischen Ionen в Томатенпфланцене. Z. Pflanzenernaehr. Bodenkd. 134 , 236–246.

    Google ученый

  • 15

    Оверрейн, Л. Н. и Мо, П. Г. 1967 Факторы, влияющие на гидролиз мочевины и улетучивание аммиака в почве.Почвоведение. Soc. Являюсь. Proc. 31 , 57–61.

    Google ученый

  • 16

    Papenhagen, A. 1975 Einfluss von Sprossklima und Salzkonzentration der Naehrloesung auf Transpiration und Assimilation von Gurkenpflanzen. Дисс. TU Hannover.

  • 17

    Петерсон, Л. А. и Честерс, Г. 1964 Надежное определение общего азота в тканях растений, накапливающих нитратный азот. Агрон. J. 56 , 89–90.

    Google ученый

  • 18

    Стюарт, Д.М. и Хэддок, Дж. Л. 1968 Ингибирование поглощения воды корнями сахарной свеклы аммиаком. Plant Physiol. 43 , 345–350.

    Google ученый

  • 19

    Требст А. В., Лосада М. и Арнон Д. Л. 1960 Фотосинтез изолированными хлоропластами XII. Ингибиторы ассимиляции CO 2 в восстановленной системе хлоропластов. J. Biol. Chem. 235 , 840–844.

    PubMed

    Google ученый

  • 20

    Уир, Б.Л., Полсон, К. Н. и Лоренц, Д. А. 1972 г. Влияние аммиачного азота на растения салата ( Lactuca sativa ) и редиса ( Raphanus sativus ). Почвоведение. Soc. Являюсь. Proc. 36 , 462–465.

    Google ученый

  • 21

    Витт, Х. Х. 1975 Die Beurteilung des Molybdaen-Ernaehrungszustandes von Pflanzen mit Hilfe der Nitratreduktaseaktivitaet. Дисс. TU Hannover.

  • Недорогое и простое домашнее удобрение для растений

    Почему я не узнал об этом раньше ?!

    Думаю, мы все согласны с тем, что садоводство — это тяжелый труд! Неважно, выращиваете ли вы огород или ухаживаете за цветочными горшками, уход за драгоценными растениями — довольно ответственная работа с частичной занятостью.После всей этой тяжелой работы может быть неприятно, когда ваши растения не такие большие или красивые, как вам хотелось бы!

    Связано: 6 советов по садоводству, которые сэкономят вам время и энергию

    Правильное удобрение для растений может помочь дать вашим растениям столь необходимый импульс, но удобрения, купленные в магазине, могут быть дорогими. Так как же кормить растения, не опустошая кошелек? Ответ на самом деле довольно прост — сделайте собственное удобрение для растений в домашних условиях!

    Сегодня я поделюсь домашним удобрением для растений, которое легко сделать и очень недорого.На самом деле, ингредиенты достаточно распространены, и они уже могут быть у вас в кухонном шкафу!

    Как это работает

    Для приготовления этого удобрения вам понадобится всего несколько простых ингредиентов. Во-первых, это соль эпсома, которая является отличным источником магния для растений. Магний имеет решающее значение для фотосинтеза, а также помогает растениям усваивать другие важные минералы. Второй ингредиент — это пищевая сода, которая действует как натуральный фунгицид, защищая растения от смертельных заболеваний.Последний ингредиент в этом рецепте — бытовой аммиак. Может показаться нелогичным добавлять аммиак в растения, но на самом деле аммиак является отличным источником азота. Азот необходим для пышного роста листьев ваших растений.

    Эти 3 ингредиента стоят очень недорого, и вам нужно всего лишь немного каждого, чтобы приготовить домашнее удобрение для растений. Вы можете кормить свои растения всего за несколько центов материалов — это действительно легкая задача для любого садовода. Вот как приготовить это дома!

    Связано: Это лучшее, что вы можете начать делать для своего сада

    Самодельное удобрение для растений

    Вам понадобится:

    • 1 галлон воды
    • 1 столовая ложка соли эпсома
    • 1 пищевая сода
    • 1/2 чайной ложки бытового аммиака
    • Большая миска или контейнер
    • Лейка

    Указания:

    Для начала нагрейте около 1/2 стакана воды в микроволновой печи или на плите.Добавьте английскую соль и пищевую соду в горячую воду и перемешайте до полного растворения.

    Затем налейте растворенную соль эпсома и пищевую соду в большую миску или контейнер. Затем вылейте в емкость оставшуюся воду (комнатной температуры) вместе с нашатырным спиртом.

    Наконец, перелейте смесь в лейку и поливайте ею цветы и растения. Повторяйте процесс один раз в месяц, чтобы ваши растения были довольны и сыты!

    Поднос для рассады пахнет аммиаком, что мне делать? : садоводство

    … я должен просто просверлить большие отверстия в нижней части ячеек и дать им высохнуть / проветриться без крышки или попытаться вытащить все семена, так как они всего полторы недели, и пересадить их? Или им уже поздно?

    Какие растения? Возможно, будет невозможно высунуть семена и начать все сначала. Например, у вас примерно 10 дней, верно? Так что, если это семена львиного зева, вы не только столкнетесь с трудностями при поиске этих мелких семян, но и пропустите их 7-10-дневное окно прорастания.Если бы это было более крупное семя, что-то вроде перца, вы, вероятно, могли бы выкапывать / выкапывать семена, которые, возможно, еще не начали прорастать, но имеют более длительный период прорастания, составляющий 2 недели плюс. Вы могли бы выкопать семя (если оно достаточно большое) и исследовать его, чтобы увидеть, делает ли оно что-нибудь еще; затем решите, хотите ли вы начать все сначала.

    Я бы больше дырок в клетке не сверлил. Если вы поливаете слишком много воды, вам нужно решить эту проблему. В квартирах-камерах, которые я видел, есть адекватные дренажные отверстия.

    Я с уважением не согласен с комментарием другого автора (относительно нитратов, разложения и т. Д.). Я согласен с его кратким описанием процесса, но не согласен с выводом о том, что насыщенная аммиаком почва безвредна для прорастания. Мои рассуждения двоякие: саженцам нужен баланс почвы, надлежащей влажности, кислорода и питательных веществ (питательные вещества в нужное время, в правильной форме). что вы лишаете рассаду почвенного кислорода и обеспечиваете питательными веществами в форме, которую они не могут использовать на данном этапе своего роста.Аммиак — это хорошо растворимая соль, которая может отрицательно повлиять на прорастание и уровень pH. Кроме того, из-за избытка влаги вы настраиваете себя на другие проблемы с рассадой, такие как отсыревание, плесень, водоросли и т. Д.

    Я проращиваю изрядное количество семян каждый год и, вероятно, мог бы предложить вам массу предложений, но я ‘ Я, наверное, слишком долго болтала здесь, и, не зная, что / сколько ты пытаешься вырасти, это сделало бы меня хамом.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.